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单抗药物用宿主细胞蛋白(HCP)残留检测方法学验证

来源: 发布时间:2025年10月14日

宿主细胞残留蛋白(HCP)检测是生物制品质量控制的关键环节,当前主流技术为基于抗体的免疫学方法(如 ELISA)。但实际检测中,不同试剂盒的结果常存在明显偏差,关键问题源于其两大关键组分 ——HCP 校准品与检测抗体 —— 在制备及表征上的高度可变性。作为定量基准的校准品,自身复杂性极高。不同供应商制备时,所用细胞来源、培养及表达条件存在明显差异,且宿主蛋白的提取纯化工艺(如目标产物去除策略)也各不相同,这些差异直接导致校准品的组成、对实际样品的代表性及储存稳定性千差万别。检测抗体(尤其是多克隆抗体)需通过免疫动物获得,其特异性与 HCP 覆盖度受多重因素影响:免疫原的选择、动物个体免疫应答差异、免疫方案设计,以及后续抗体筛选与纯化流程,都会让不同批次或来源的抗体,在对不同 HCP 的亲和力、对低丰度蛋白的检测灵敏度等识别谱特性上,形成本质区别。
抗体覆盖率是 HCP 检测关键指标,影响结果可信度,需通过方法验证。单抗药物用宿主细胞蛋白(HCP)残留检测方法学验证

单抗药物用宿主细胞蛋白(HCP)残留检测方法学验证,宿主细胞蛋白(HCP)残留检测

湖州申科生物CHO-K1HCP残留检测试剂盒(一步酶联免疫吸附法),采用固相酶联免疫吸附法原理,可对CHO-K1细胞生产的生物制品中宿主残留蛋白进行定量检测。检测时,向预包被抗CHO-K1HCPs绵羊多抗的酶标板中,加入校准品或待测样品、HRP标记的抗CHO-K1HCPs绵羊多抗共同孵育。洗涤后加入TMB底物显色,随后用终止液终止酶促反应;再用酶标仪在450nm波长下测定吸光度,该吸光度与校准品或待测样品中HCPs浓度呈正相关,依据校准品拟合的剂量-反应曲线,即可算出待测样品中HCPs的浓度。该试剂盒对待测样品无需特殊处理,通过合适稀释比例的适用性验证,即可直接使用。且试剂盒操作步骤少、检测快速,同时具备专一性强、性能稳定可靠的特点。
MRC-5宿主细胞蛋白(HCP)残留检测方法学验证湖州申科全自动 HCP ELISA 系统实现从加样到检测自动化,提升效率。

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大肠杆菌具有遗传背景明确、便于培养与调控、蛋白表达量高、成本低廉且培养周期短等特点,是性价比高的蛋白表达系统。其中,K-12系列与B系列菌株是工业级生物工程中常用的大肠杆菌菌株。K-12菌株及其衍生的DH5α、Top10、JM109等菌株,可用于大规模生产质粒DNA,进而制备细胞基因治疗产品与病毒载体类疫苗;而源自B系列的菌株(如BL21),更适合高效转染表达载体及常规蛋白的表达,例如病毒蛋白、重组蛋白疫苗、细胞因子、酶类等产品。湖州申科生物依据这两种菌株的特性,分别研发了大肠杆菌表达菌HCP残留检测试剂盒与大肠杆菌克隆菌碱裂HCP残留检测试剂盒。

HEK293细胞源自人胚肾细胞,在细胞与基因治疗领域应用较广,例如用于病毒载体生产等。尽管生物制品会经过多步纯化工艺去除相关杂质,但微量残留的宿主细胞蛋白(HCP)仍可能引发机体免疫应答,进而影响产品质量与安全性。因此,需对生产工艺中残留的HEK293 HCP开展定量检测,确保其符合产品放行标准。湖州申科生物的HEK293 HCP残留检测试剂盒(一步酶联免疫吸附法),适用于对HEK293及HEK293T来源生物制品(如重组蛋白类、细胞和基因治疗类等)中的宿主细胞蛋白进行定量检测。该试剂盒检测步骤少、速度快,且具备专一性强、性能稳定可靠的特点。
为确保HCP ELISA检测产品符合申报要求,湖州申科在试剂盒的全流程开发方案严格按照法规要求。

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中国仓鼠卵巢细胞(Chinese Hamster Ovary,CHO)是生物制品生产中常用的动物细胞表达系统,广泛应用于抗体、重组蛋白、疫苗等产品的制备。采用 CHO 细胞作为宿主进行生产时,难免会引入宿主细胞蛋白(HCP)杂质;即便 HCP 残留量较低,仍可能存在免疫原性,还会带来降低产品蛋白稳定性等风险。因此,需对生物制品中的 HCP 残留进行定量分析,从而保障纯化工艺的一致性与终产品的安全性。SHENTEK®CHO 宿主细胞蛋白(HCP )残留检测试剂盒实现了关键试剂的全国产化,其通过 CHO 细胞(K1&S)补料分批培养工艺制备 HCPs,再以此免疫绵羊获取抗体,适用于检测 CHO 细胞系表达的生物制品(如单抗、重组蛋白、疫苗等)中的 HCP 残留。该试剂盒具有操作步骤少、检测速度快、专一性强、性能稳定可靠的特点。
湖州申科HCP试剂盒定制化开发方案全流程按照ISO13485质量保证体系管理,符合审计要求。酿酒酵母宿主细胞蛋白(HCP)残留检测试剂盒

湖州申科可根据客户要求,快速定制符合用户生产工艺的HCP商业化检测试剂盒,满足用户快速替换的检测需求。单抗药物用宿主细胞蛋白(HCP)残留检测方法学验证

宿主细胞蛋白(HCP)的来源中,常伴随核酸、胞膜脂类及培养基中的氨基酸等非HCP成分,这些成分会干扰总蛋白检测的准确性,因此在检测前需开展纯化前处理,同时对总蛋白检测方法实施方法学确认。HCP本身属于多蛋白混合物,不同总蛋白定量方法的检测结果会存在一定差异,这也是造成HCP免疫检测方法结果不一致的原因之一。若不同HCP蛋白定量方法的检测结果差异较大,通常需同时采用2种及以上经确认的方法进行检测,随后取平均值。总蛋白检测方法的定量限通常只能达到μg/mL级别,而HCP检测试剂盒的产品校准品浓度则处于ng/mL级别。将HCP高浓度原液稀释至低浓度产品校准品的过程中会产生稀释误差,因此需对产品校准品重新进行标定赋值。编辑分享用多种方法确认检测结果时,如何选择合适的方法组合?总蛋白检测定量限与HCP校准品浓度差异大的原因是什么?有哪些方法可以降低非HCP成分对检测的干扰?
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