南通如何使用疾病动物模型建模

急性肺损伤模型大鼠(右)与对照组大鼠肺部照片对比5.2.2肺的湿/干重比检测：肺的湿/干重比是反应肺水肿的直接指标，也是反应肺损伤严重程度的敏感指标。在急性肺损伤发生后，大量液体渗出至肺泡和肺间质，导致肺的重量增大，而肺的干重则不受影响。处死大鼠、剪断气管后取全肺，称湿重，然后将肺置于65℃恒温箱中干燥，24h后取出称干重，计算肺湿/干重比值。图7.急性肺损伤模型大鼠(ALI)与对照组大鼠肺干湿重比随不同时间点的变化。5.2.3肺泡盥洗液（BALF）中细胞计数：小鼠取血后，开胸，分离纵膈，注射器抽取3ml生理盐水从气管插管推入肺中，每次反复灌洗3次后抽出灌洗液，肺泡灌洗液以4℃3000r/min离心15min，取上清，保存于-80度用于后续检测。便于研究者按实验目的需要随时采取各种样品。南通如何使用疾病动物模型建模

SPF级SD雄性大鼠，体重约200～220g。使用脂多糖（LPS）诱导建立急性肺损伤模型。将大鼠放入固定盒中，用酒精檫拭大鼠尾静脉后，按压住尾静脉1/3处，注射器进针后回抽有血后注入LPS溶液（溶于生理盐水，给药剂量10mg/kg），从而建立内性急性肺损伤大鼠模型。对照组的大鼠尾静脉注射等体积的生理盐水。5.2模型鉴定及后续检测：5.2.1肺损伤后的目视观察：如下图所示，在急性肺损伤模型小鼠中，肺部有多处明显渗血，后有肉眼可见肺部大面积出血渗出，可以直观的反映肺损伤程度。徐汇区成瘤疾病动物模型建模收集研究疾病的生物学信息资料。

图2是从侧面展示的压迫元件插入椎间孔的结构示意图。图3是术后大鼠四肢表现情况。图4是术后28天大鼠的双下肢缩足阈值变化曲线图。图5是重复经颅磁刺激对大鼠背根神经压迫模型的影响。具体实施方式以下通过具体的实施例对本发明的技术方案做进一步的描述。以下的实施例是对本发明的进一步说明，而不是限制本发明的范围。实施例1、模型的制备1、腹腔注射1％戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉大鼠(220-250g)，背部剃毛，碘伏消毒背部皮肤，俯卧位固定于动物手术台上，铺无菌巾。2、于大鼠腰4到骶1水平左侧作一2-3cm纵行切口，切开皮肤，钝性分离椎旁肌至横突上方，暴露腰4椎间孔，腰5椎间孔(椎旁肌可用自制拉钩保持分离状态)。3、将2根***端11为4mm，第二端12为2mm，直径为，第二端12置于腰4椎间孔及腰5椎间孔外。如图1和2所示，可以看到腰4锥体1、腰5锥体2、腰6锥体3、l型棒10、腰4神经根4和腰5神经根5的位置关系。当l型棒10的***端11插入腰4锥体1的腰4椎间孔后，会对腰4神经根4起到压迫作用；同样的，当l型棒10的***端11插入腰5锥体2的腰5椎间孔后，会对腰5神经根5起到压迫作用。从而达到模拟腰椎间盘突出压迫神经根的目的，制备得到大鼠慢性背根神经压迫模型。

动物模型的优越性主要表现在以下几下方面。（一）避免了在人身上进行实验所带来的风险临床上对外伤、中毒、肿痛病因等研究是有一定困难的，甚至是不可能的，如急性和慢性呼吸系统疾病研究进很难重复环境污染的作用。辐射对机体的损伤也不可能在人身上反复实验。而动物可以作为人类的替难者，在人为设计的实验条件下反复观察和研究。因此，应用动物模型，除了能克服在人类研究中经常会遇到的理论和社会限制外，还容许采用某些不能应用于人类的方法学途径，甚至为了研究需要可以损伤动物组织、或处死动物。（二）临床上平时不易见到的疾病可用动物随时复制出来临床上平时很难收集到放射病、毒气中毒、烈性传染病等病人，而实验室可以根据研究目的要求随时采用实验性诱发的方法在动物身上复制出来。动物模型的意义和优越性！

动物模型名称：皮肤浅II°及深II°烫伤大鼠模型2、实验动物种属：SD大鼠3、实验动物性别：雌雄不限4、实验动物年龄：成年5、实验动物体重：160-200g6、实验动物环境：SPF级1、实验方法：热力致皮肤损伤法。麻醉大鼠，根据体重腹部备皮，然后固定于实验台上。将大鼠移近加热纯净水的烧杯，将纱布条浸入热水中，待水温恒定于99℃时，取出纱布，立即平铺于待烫部位，于纱布接触大鼠皮肤后开始计时。致伤3s为浅II°烫伤，致伤10s为深II°烫伤。2、检测标准：a.皮肤大体观察：致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好，有少量红褐**素沉着，皮肤轻微挛缩，表皮光滑；致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好，皮肤瘢痕形成，表面粗糙不平。b.皮肤组织病理学观察：致伤3s大鼠表皮层次尚清楚，细胞明显肿胀、变性，层次结构尚清楚，细胞核结构不清；致伤10s大鼠表皮细胞部分脱落，结构不清，明显变性、坏死，部分细胞已溶解。大量的遗传变异可作为研究人类疾病的借鉴。南通如何使用疾病动物模型建模

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    IgA肾病小鼠模型一、目的建立IgA肾病小鼠模型，并观察模型的生化及病理指标特点。二、试剂耗材1、酸化水：盐酸调灭菌水；2、蓖麻油+CCl4：5:1配制；3、LPS：生理盐水配制；4、血清白蛋白BSA：800mg/kg用量，灭菌水配制；三、方法：小鼠BSA+CCl4+脂多糖LPS诱导法1、20g小鼠牛血清白蛋白BSA(800mg/kg)隔天灌胃1次，配制160mg/ml，灌胃100ul/只，持续8周；2、同时皮下注射蓖麻油和CCl4（5:1），1次/周，持续8周；3、分别于第6、8周以（）尾静脉注射LPS，1次/周；4、每两周取24h尿液一次观察尿蛋白及红细胞；5、每日观察精神、饮食、大小便，第9周处死，取血和肾、肝做相应检查；6、取尿液后2000r/min离心10min，取上清用全自动生化仪检测尿蛋白肌酐比值，镜下观察尿沉渣中有无红细胞。南通如何使用疾病动物模型建模