动物购买的途径、安置的地点,饮食管理(一般实验室会有动物房,也可以从其他地方购买),动物免疫证明、伦理证明需要提前准备好。实验相关的试剂和药物:比如造模药物和器械,动物干预所需药物,阳物选择及购买(有些药物购买很困难,必须通过特殊程序才能买到)。如果涉及到有创操作,要提前准备好物(建议提前购买),手术器械。需要了解自身实验平台能完成哪些技术(常见的有组织病理染色、WesternBlot、PCR等),实验仪器是否需要预约使用。如果需要外送生物公司检测,需要提前联系好商家,以及了解清楚样本如何获取,如何运输。饲养动物及干预动物购买后需要将时间节点提前规划好,比如,周需要做什么?测量体重?观察饮食?测量需要的指标?中间有无特殊操作?比如灌胃、测量体重、做CT检测、取血?……第几周取材?取材需要哪些组织?预实验方案就要提前设计清楚以上内容。取材及样品准备取材需要提前到动物房禁食、称体重、取出动物、手术器械的消毒、组织固定所需要的试剂和EP管,WesternBlot和PCR所需要的样本储存条件。比如冻存管、EP管,是否需要冰块?是否需要液氮?取材当天需要多少人?是否需要请人帮忙?如果所需要取出的样本较多,建议大家请人一起帮忙。模型应适用于多数研究者使用,容易复制,实验中便于操作和采集各种标本。淮安疾病动物模型建模购买
APOE-/-鼠左颈动脉结扎糖尿病模型目的:用APOE-/-鼠做左颈动脉结扎后注射STZ造糖尿病模型一、材料:动物:APOE-/-鼠;试剂:STZ、柠檬酸缓冲液;器械:眼科剪、眼科弯镊、眼科剪、手术剪、手术镊、6-0非吸收缝合线、4-0缝合线;二、颈动脉结扎模型建立:APOE-/-鼠做左颈动脉内颈支脉和外颈支脉结扎,其中外颈支脉结扎点需要保持甲状腺支脉于左颈动脉畅通;三、糖尿病模型建立:1、柠檬酸缓冲液配制:A液:柠檬酸g+双蒸水100ml;B液:柠檬酸三钠g+双蒸水100ml;A液与B液1:混合,调整PH为;2、STZ液配制:取STZ溶于柠檬酸缓冲液中,浓度为10mg/ml,um滤头过滤,避光,现配现用,10min内使用;术前禁食12h,100mg/kg腹腔注射SZT液,连续2d;四、检测:颈动脉组织HE。奉贤区纤维化疾病动物模型建模开展小鼠疾病模型初步研究分析小鼠疾病模型研究初步结果与生物学信息资料等相关知识间的差距!
许多病原体除人以外也能引起多种动物的,其症状体征表现可能不完全相同。但是通过对人畜共患病的比较,则可以充分认识同一病原体给不同机体带来的各种危害,使研究工作上升到立体的水平来揭示某种疾病的本质。因此,一个好的疾病模型应具有以下特点:①再现性好,应再现所要研究的人类疾病,动物疾病表现应与人类疾病相似。②动物背景资料完整,生命周期满足实验需要。③复制率高。④专一性好,即一种方法只能复制出一种模型。应该指出,任何一种动物模型都不能全部复制出人类疾病的所有表现,动物毕竟不是人体,模型实验只是一种间接性研究,只可能在一个局部或一个方面与人类疾病相似。所以,模型实验结论的正确性是相对的,终还必须在人体上得到验证。复制过程中一旦发现与人类疾病不同的现象,必须分析差异的性质和程度,找出异同点,以正确评估。
模型小鼠与对照小鼠BALF中各类细胞因子的表达水平对比6.2.2肺组织病理学检测HE染色检测:待造模完成后,腹腔麻醉小鼠后,开胸暴露胸腔:取左侧肺叶固定于10%甲醛溶液24h,常规脱水石蜡包埋,切片行HE染色,光镜下观察。结果显示:空白对照组小鼠肺泡结构清晰,肺泡大小均匀,气道黏膜上皮结构完整,纤毛排列整齐;模型对照组小鼠肺组织肺间隔增厚,支气管部分上皮细胞脱落,有淋巴细胞浸润。模型小鼠(右)相对于对照组小鼠肺部组织HE染色对比阿尔辛蓝—过碘酸雪夫氏染色(AB-PAS染色)检测:待造模完成后,腹腔麻醉小鼠后,开胸暴露胸腔:取左侧肺叶固定于10%甲醛溶液24h,常规脱水石蜡包埋脱蜡至水,切片行AB-PAS染色,光镜下观察。小鼠疾病模型研究也是人相关疾病药物研发的起点。
1、动物模型名称:泪腺摘除联合新洁尔灭致干眼兔模型2、实验动物种属:新西兰兔3、实验动物性别:雌雄不限4、实验动物年龄:2~3月龄5、实验动物体重:1.8~2.5kg6、实验动物环境:SPF级,1、实验方法:摘除泪腺联合新洁尔灭诱导。兔耳缘静脉注射戊巴比妥钠联合肌肉注射进速眠新Ⅱ进行麻醉。麻醉后,进行泪腺摘除手术,眼睑局部以75%酒精消毒,铺洞巾,于眼下眶周部做一切口,小心分离皮肤、肌肉、筋膜,寻找到泪腺后完整摘除之,然后缝合创口。术毕,滴妥布霉素**眼液2滴、涂四环素可的松眼药膏,共7d。术后兔创口愈合后进行给药造模。眼滴0.1%新洁尔灭溶液,2次/天,2滴/次,连续用药14d。2、检测标准:SchirmerI试验泪液分泌减少,1%虎红角膜染色试验虎红着色评分值高,角膜出现病理改变。能够准确模拟人相关特定功能与疾病特征。上海疾病动物模型建模厂家
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是从侧面展示的压迫元件插入椎间孔的结构示意图。图3是术后大鼠四肢表现情况。图4是术后28天大鼠的双下肢缩足阈值变化曲线图。图5是重复经颅磁刺激对大鼠背根神经压迫模型的影响。具体实施方式以下通过具体的实施例对本发明的技术方案做进一步的描述。以下的实施例是对本发明的进一步说明,而不是限制本发明的范围。实施例1、模型的制备1、腹腔注射1%戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉大鼠(220-250g),背部剃毛,碘伏消毒背部皮肤,俯卧位固定于动物手术台上,铺无菌巾。2、于大鼠腰4到骶1水平左侧作一2-3cm纵行切口,切开皮肤,钝性分离椎旁肌至横突上方,暴露腰4椎间孔,腰5椎间孔(椎旁肌可用自制拉钩保持分离状态)。3、将2根***端11为4mm,第二端12为2mm,直径为,第二端12置于腰4椎间孔及腰5椎间孔外。如图1和2所示,可以看到腰4锥体1、腰5锥体2、腰6锥体3、l型棒10、腰4神经根4和腰5神经根5的位置关系。当l型棒10的***端11插入腰4锥体1的腰4椎间孔后,会对腰4神经根4起到压迫作用;同样的,当l型棒10的***端11插入腰5锥体2的腰5椎间孔后,会对腰5神经根5起到压迫作用。从而达到模拟腰椎间盘突出压迫神经根的目的,制备得到大鼠慢性背根神经压迫模型~淮安疾病动物模型建模购买