诱导式关节炎模型根据造模物质的不同进行分类,常见的有佐剂诱导型、胶原诱导型和胶原抗体诱导型关节炎。其中大鼠CIA模型的组织和免疫学改变与人RA**接近,AA模型的病情表现**为明显和持续。
(一)佐剂诱导型(AA)AA,又称为弗氏佐剂关节炎,介导溶剂分为完全佐剂(CFA)和不完全佐剂(IFA)。通常用CFA作介导剂,AA模型在T细胞相关致炎通路的药物筛选上发挥着重要的作用。
(二)胶原诱导型(CIA)CIA模型是由Trentham等于1977年***建立的实验性关节炎动物模型。通过皮下注射Ⅱ型胶原和等量CFA的混合液来建造,来源于鸡、小牛和大鼠的Ⅱ型胶原均能引起关节炎症。CIA是MHC相关型,以T/B淋巴细胞介导的关节炎症侵蚀为主要特征。
(三)胶原抗体诱导型(CAIA)抗Ⅱ型胶原单克隆抗体源自8周大的雄性DBA/1J小鼠CIA模型,这些抗体混合物注射到模型小鼠的关节腔后可直接作用于Ⅱ型胶原或其他在体内高表达的自身抗原,从而发挥免疫介导作用。该模型的临床症状与CIA和RA很相似,突出特点是能在几天之内迅速发病,关节组织中巨噬细胞和多核型白细胞浸润。该模型很好的体现了外源性抗原抗体刺激体诱导的严重关节损伤。 哪家公司实验动物模型成功率比较高?山西制作实验动物模型要多久
蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂,血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤,脑动、静脉畸形,血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此,蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处,造模时可同时作为参考。
英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模,及其他动物模型。
复制方法 :健康大鼠,雌雄不拘,体重为250~350g。将钓鱼线剪成长约50mm,并在18mm处作标记,酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定,剃除颈部毛发,手术区域皮肤消毒。颈正中切口,分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉,结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉,并游离颈外动脉主干,沿着颈内动脉暴露翼腭动脉,在颈外动脉残端放一丝线,使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹,同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口,将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧,除去颈内动脉的动脉夹,继续将丝线沿着颈内动脉插入,直至感到有阻力,这时稍用力再插入1.0~1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 安徽提供实验动物模型实验实验动物模型公司靠谱吗?
实验动物模型,英瀚斯生物公司设有动物实验平台、分子生物学平台、细胞生物学平台、组织病理学平台以及电生理检测等平台,可以为制药公司、医院、科研单位等科研工作者提供专业的整体科研解决方案和一站式医学科研服务。动物模型是活的非人类动物,主要用于实验生理学、实验病理学和实验医疗学(包括新药筛选)研究。其通常在调查与研究人类疾病期间使用,以达成更好地理解疾病,并避免对真人造成损害的目的。动物的选择,通常满足生物分类所确定的对人类等价性,因而其对疾病的反应或医疗方法与人类的生理需要相似。
胃溃疡模型
造模方法
其中乙酸法组、假手术对照组因需要手术每组为20只(以免术后意外死亡使这些组别的样本减少),其余各组为16只。以造模前1日为第0日,造模当天为第1日。除正常对照组外,其余8组于第0日上午7:00同时开始禁食不禁水至第1日上午7:00,达24h。
具体如下:1)空白(正常)对照组:正常饮水、摄食。2)禁食对照组:正常饮水,继续禁食至晚19:00。3)水浸拘束组:早晨7:00开始,将各小鼠置于小鼠固定器中,限制活动,头朝上立于23℃左右的恒温水浴内,水面齐剑突,至晚19:00。4)乙酸组:早晨8:00,**吸入麻醉小鼠,无菌手术开腹,暴露胃,在胃前壁浆膜面窦体交接处同一部位(避开血管),用浸有冰醋酸,边长为5mm的正方形滤纸接触2次,每次30秒,然后还纳胃体,逐层缝合切口。5)假手术对照组:方法同乙酸法组,滤纸浸生理盐水。乙酸及假手术组交替进行,早11:00前手术结束。6)磷酸组织胺组:上午11:00,灌胃8mg/ml磷酸组胺溶液0.8mg/10g。7)***痛组:下午13:00,皮下注射5mg/ml***痛NaHCO3溶液0.3mg/10g。8)利血平组:下午13:00,皮下注射1mg/ml利血平注射液0.1mg/10g。9)乙醇组:下午18:00,灌胃无水乙醇0.1ml/10g。 英瀚斯生物,承接大鼠实验动物模型。
心血管疾病实验动物模型,英瀚斯生物小编为您介绍:1)动脉性粥样硬化动物模型常选用兔、猪、大鼠、鸡、鸽、猴和狗等。常用的方法有高胆固醇、高脂肪饲料法,免疫学法、儿茶酚胺药物注射法等。兔的优点为敏感性高,容易造成模型,时间短,缺点为它的脂质代谢与人类不同,兔表现为血源性泡沫细胞增多,解剖分布以胸动脉为主,小动脉常有病变。猪与人类相似,结合胸X-线照射,可引起冠状动脉痉挛。2)心肌缺血和心肌梗死电刺激法,雄兔麻醉后,用弱、强电交替刺激(0.8-1.6mA及4-6mA)右侧下丘脑背侧核,即可形成心肌缺血模型;药物法,给大鼠或兔注射异丙肾上腺素,狗静脉注射麦角新碱复制冠状动脉痉挛;冠状动脉阻断法,用大鼠或狗麻醉,在冠状动脉套上压迫环,复制心肌缺血和心梗模型。3)高血ya疾病动物模型可采用肾包扎法及肾动脉缩窄法复制继发性高血ya,用噪声刺激复制神经性高血ya模型。英瀚斯专业团队负责实验动物模型研究。山西常见实验动物模型制作方法
英瀚斯生物公司 动物房、手术操作实验室,可制作各类实验动物模型。山西制作实验动物模型要多久
实验动物模型的灌注取材方法:
小鼠灌注灌流
固定小鼠时我一般采用输液器的针头(4号半,这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白,针头要从心轴方向进针,刺入心尖3~4毫米左右就可以了,开始灌流后剪破右心耳,约40毫升生理盐水,后再灌流约20毫升多聚甲醛,整个灌流固定的过程就完成了。
英瀚斯生物,从动物模型造模、取材到后续病理切片染色、分子检测一站式搞定!
大鼠灌注
按大鼠体重,用2%戊巴,比妥钠(0.25ml/100g)进行腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,向左心室内注射1%肝素钠0.2ml后经左心室行主动脉插管,血管钳固定后剪开右心耳,先以生理盐水150ml快速冲洗血管,然后用4%多聚甲醛的0.01mol/LPBS(4℃,PH7.40)250ml灌注固定,先快后慢,共需时间为50min,之后取材,置4%多聚甲醛固定液后固定,在4℃冰箱内保存。多聚甲醛进入大鼠体内,大鼠会出现四肢、尾的抽搐,**终以肝脏发白、内脏鼓起即灌注好。 山西制作实验动物模型要多久