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PCR方法主要可以分为三类：终点PCR、qPCR和dPCR。终点PCR终点PCR是较原始、较简单的PCR方法，如今仍在被我们普遍使用。使用者只能在PCR反应结束之后，通过凝胶电泳、毛细管电泳等方法对产物进行检测。终点PCR本身是无法定量的，因为该反应产出的DNA量不一定能反映较初情况。举例来说，不同样品和序列的扩增效率是有差异的。qPCR和dPCR研究者们通过两种途径克服了PCR定量分析的挑战：实时定量PCR（qPCR）和数字PCR（dPCR）。qPCR主要是利用插入性染料或荧光探针（比如TaqMan），人们可以通过监控PCR过程中的荧光强度比较多个样品的DNA水平。数字PCR（dPCR）的基本工作原理很简单，先将样品划分为多个PCR反应，每个反应较多只含有一个模板。然后通过计数正负反应来确定初始样品中模板分子的数量。pcr检测主要是检测什么？海南常见pcr怎么选择

PCR原理:PCR是在试管中进行的DNA复制反应，基本原理是依据细胞内DNA半保留复制的机理，以及体外DNA分子于不同温度下双链和单链可以互相转变的性质，人为地控制体外合成系统的温度，以促使双链DNA变成单链，单链DNA与人工合成的引物退火，然后耐热DNA聚合酶以dNTP为原料使引物沿着单链模板延伸为双链DNA。PCR全过程每一步的转换是通过温度的改变来控制的。需要重复进行DNA模板解链、引物与模板DNA结合、DNA聚合酶催化新生DNA的合成，即高温变性、低温退火、中温延伸3个步骤构成PCR反应的一个循环，此循环的反复进行，就可使目的DNA得以迅速扩增。DNA模板变性：模板双链DNA?单链DNA，94℃。退火：引物＋单链DNA?杂交链，引物的Tm值。引物的延伸：温度至70℃左右，TaqDNA聚合酶以4种dNTP为原料，以目的DNA为模板，催化以引物3’末端为起点的5’→3’DNA链延伸反应，形成新生DNA链。新合成的引物延伸链经过变性后又可作为下一轮循环反应的模板PCR，就是如此反复循环，使目的DNA得到高效快速扩增。安徽组织pcr价格有没有做pcr检测比较快比较好的公司？

PCR出现非特异性扩增带的原因分析：PCR扩增后出现的条带与预计的大小不一致，或大或小，或者同时出现特异性扩增带与非特异性扩增带。非特异性条带的出现，其原因：一是引物与靶序列不完全互补、或引物聚合形成二聚体。二是Mg2+离子浓度过高、退火温度过低，及PCR循环次数过多有关。其次，是酶的质和量，往往一些来源的酶易出现非特异条带而另一来源的酶则不出现，酶的量过多有时也会出现非特异性扩增。其对策有：①必要时，重新设计引物。②减低酶的量或调换另一来源的酶。③降低引物量，适当增加模板量，减少循环次数。④适当提高退火温度或采用二温度点法(93℃变性，65℃左右退火与延伸，也叫两步法)。

PCR出现假阳性的原因分析。引物设计不合适：选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性，因而在进行PCR扩增时，扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短，容易出现假阳性。需重新设计引物。靶序列或扩增产物的交叉污染：这种污染有两种原因：一是整个基因组或大片段的交叉污染，导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决：①操作时应小心轻柔，防止将靶序列吸入加样器内或溅出离心管外。②除了酶及其他不耐高温的物质外，所有试剂或器材均应高压消毒。所用离心管均应一次性使用。③必要时，在加标本前，反应管和试剂用紫外线照射，以破坏存在的核酸。二是空气中的小片段核酸污染，这些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。可互相拼接，与引物互补后，可扩增出PCR产物，而导致假阳性的产生，可用巢式PCR方法来减轻或消除。简述荧光定量pcr的基本原理。

PCR样本可分2种，DNA样本和RNA样本。一，DNA样本：已经提取好的DNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，需全血，加入抗凝剂，抗凝管4度保存；组织样本，需冻存管或干净灭菌的离心管装，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。二，RNA样本：提取好的RNA样本，负80度保存，干冰运输；血液样本，全血，加入抗凝剂，4度冰箱保存；组织样本，冻存管或干净灭菌离心管，负80度保存，干冰运输；细胞样本，用胰酶消化后的细胞沉淀，负20度或负80度保存。长时间保存，可加Trizol，其中血液用TrizolLS组织和细胞沉淀用Trizol。英瀚斯生物，分子平台实验人员十年以上经验，专业pcr检测。海南常见pcr怎么选择

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