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BALB/c-nu裸鼠主要用途：广泛应用于zhong瘤学、免疫学、毒理学等基础医学和临床医学的研究。简介：1973年丹麦的C.W.Friis在BALB/cA近交系小鼠中发现自发性突变的无毛小鼠，该突变小鼠胸腺发育不良，免疫T细胞缺失，而培育成了BALB/cA-nu。特点：无毛、裸鼠、无胸腺。随着年龄增长，皮肤逐渐变薄、头颈部皮肤出现皱折、生长发育迟缓。由于无胸腺而只有胸腺残迹或异常胸腺上皮(该上皮不能使T细胞正常分化)，导致缺乏成熟的T淋巴细胞，因而细胞免疫功能低下。但6～8周龄裸小鼠的NK细胞活性高于一般小鼠。B淋巴细胞正常，但其免疫功能欠佳。表现在B淋巴细胞分泌的免疫球蛋白以lgM为主，只含少量的IgG。抵抗力差，容易患病毒性肝炎和肺炎。因此必须饲养在屏障系统中。为了提高繁殖率和存活率，一般采用纯合型雄鼠与杂合型雌鼠交配的繁殖方式，可以获得1/2纯合型仔鼠。常用裸小鼠品系：BALB/c-nu、NIH-nu、NC-nuSwiss-nu、03H-nu、C57BL-nu等。卡文斯实验鼠以稳定的遗传背景和高效的疾病模型著称。Ldlr小鼠选择

品系名称:Wistar-Kyoto品系简称:WKY品系类别:近交系大鼠品系毛色:白色产品状态:活物品系描述:1971年NIH从Kyoto医学院引入的Wistar种群中得到该品系，为超出平常血压大鼠的对照品系，雄鼠动脉收缩压为18.6-20kpa，雌鼠为17.3kpa。WKY大鼠的特点:(1)忧郁、焦虑等行为异常;(2)内分泌异常，容易应激与Wistar大鼠相比，对应激刺激具有高反应性，可能与下丘脑-垂体-肾上腺轴和下丘脑-垂体-甲状腺轴异常调节有关;(3)代谢异常。应用领域:用作超出平常血压对照、多动症(ADHD)模型对照、抑郁症模型。高脂饮食诱导肥胖模型小鼠公司排名长期睡眠剥夺的实验小鼠，其记忆力测试成绩较正常睡眠组明显降低。

净化利用受精卵透明带的屏障作用，结合体外受精和胚胎移植技术，可以去除目的品系小鼠所染的细菌、病毒、体内外寄生虫等，将小鼠微生物至SPF级及以上。卡文斯业务优势：1、净化成功率100%；2、IVF受精率，80%以上；3、双风系统动物房，IVC单独送风笼架，确保净化后代小鼠的等级安全；4、净化后代可无缝对接代理繁育业务。卡文斯冷冻保种与复苏业务详情目前主要的冻存方式是，胚胎冷冻和精子冷冻。其中精子冷冻复苏和胚胎冷冻复苏两种方法。其中精子冷冻复苏和胚胎冷冻复苏两种方法对比如下：冷冻方式精子冷冻胚胎冷冻用鼠量3只12W-24W可育成年雄鼠，0只雌鼠3只12W-24W可育成年雄鼠，30-40只雌鼠遗传物质数冻存至少20支麦管的精子液体冻存约400枚胚胎，每管冻存30-40枚胚胎技术特点精子复苏后通过IVF操作可一次性得到大量同日龄胚胎复苏后无需经过IVF操作，即可直接进行移植适用于杂合子或者纯背景的品系保种(比如B6/B适用于单基因/多基因纯合子或者特殊背景的品系保种*也可接收外来遗传物质进行复苏移植服务

实验鼠包括小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠四大类。其中，小鼠占我国实验鼠市场份额比较高，约为79.3%；其次为大鼠，约占9.8%；地鼠排名第三，约占8.1%。近年来，随着医学研究水平不断提升，我国实验鼠需求日益增加，市场规模不断扩大。2018-2022年，我国实验鼠市场规模上涨31.7亿元，年复合增长率为28.2%，其中，2022年市场规模为50.3亿元，同比上涨27.3%。此外，随着我国多项医药创新驱动战略政策出台，创新药研究逐渐兴起，带动了实验鼠行业发展，实验鼠市场需求量进一步升高，行业发展态势良好。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。

实验鼠是指经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等，具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组与人类高度同源，生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致，同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点，是目前应用较为广阔的实验动物之一，其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展，特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用，使得大规模生产实验鼠成为可能，从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征，在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。常州卡文斯实验鼠的饲料营养均衡，严格符合国际实验动物饲养标准。apoe

常州卡文斯提供基因编辑实验鼠定制服务，助力前沿生物医学研究。Ldlr小鼠选择

腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。Ldlr小鼠选择