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Recombinant Cynomolgus LY6G6DProtein

来源: 发布时间:2024年09月07日

重组人血清白蛋白(rHSA)是一种重要的蛋白质,广泛应用于生物医学领域。植物表达的细胞培养级重组人血清白蛋白(rHSA)具有多项特点和科研应用价值:1.**高纯度和安全性**:植物源重组人血清白蛋白(rHSA)通过基因工程技术在植物如水稻中表达,避免了动物源成分和血源性的病毒污染的风险,提供了一种更安全、更纯净的蛋白质来源。2.**批次稳定性**:与来源于动物的血清白蛋白相比,植物表达的rHSA提供了更高的批次间一致性和稳定性,这对于科研和工业应用中的重复性和可靠性至关重要。3.**多功能性**:rHSA在细胞培养中可以作为重要的添加成分,有助于细胞生长和维持培养环境的稳定性。它还可以作为药物载体,疫苗保护剂、细胞冻存保护剂和医疗器械包埋剂等。4.**生物相容性**:由于rHSA的化学性质与天然HSA非常接近,它在生物医药生产中具有很高的生物相容性,可以用于多种药物的配方和医疗设备。5.**科研应用**:rHSA在科研中可用于细胞培养、药物载体研究、疫苗开发、组织工程和再生医学等领域。6.**生产规模**:植物表达系统具有大规模生产重组蛋白的潜力,这对于满足全球对rHSA日益增长的需求至关重要。FnCas12a不仅可用于体外dsDNA的特异剪切,也可用于靶标核酸的快速检测,如HOLMES核酸快检技术。Recombinant Cynomolgus LY6G6DProtein,His Tag

Recombinant Cynomolgus LY6G6DProtein,His Tag,标准物质

酵母重组表达的N-糖苷酶F(PNGaseF)是一种酰胺水解酶,具有以下特点:1.**高效性**:PNGaseF是去除几乎所有N-连接寡糖从糖蛋白中有效的酶法方法。它能够在几分钟内快速且无偏倚地释放所有的N-糖链,适合后续的色谱或质谱分析。2.**重组酶**:该酶是重组的酰胺酶,能够从高甘露糖、杂合和复杂寡糖中切割内GlcNAc和天冬氨酸残基之间的连接。3.**纯度**:纯度达到95%以上,通过SDS-PAGE和完整ESI-MS进行确定。4.**储存稳定性**:在含有50%甘油的储存缓冲液中,好的活性和稳定性可维持长达24个月。5.**使用条件**:可以在原生或变性条件下使用,对于变性条件下的去糖基化,建议添加NP-40以解除SDS的抑制作用。6.**比活性**:具有高达100000U/mL的比活性。7.**His标签**:产品带有His标签,常用于抗体及其相关蛋白的完全去糖基化。8.储存条件:-25~-15℃保存,有效期1年。9.**无甘油版本**:还提供了无甘油版本的PNGaseF,这有助于在HPLC和质谱分析中获得结果。10.**酶活定义**:1个酶活力单位指在10μL的反应体系中,37℃条件下1小时从10μg变性RNaseB中除去超过95%的碳水化合物所需要的酶量。这些特点使得酵母重组表达的PNGaseF成为研究和分析糖蛋白糖链结构的重要工具。Recombinant Human CEACAM-1/CD66a (His Tag)在基因编辑中,Pfu DNA Polymerase可以用于精确地引入特定位点的突变,或在基因组中插入特定的DNA序列。

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SpCas9蛋白(来自化脓性链球菌的Cas9蛋白)在基因编辑中的主要作用是作为核酸酶,能够精确地切割目标DNA序列。以下是SpCas9在基因编辑中的几个关键步骤和作用:1.**识别和结合**:SpCas9蛋白与一个单导向RNA(sgRNA)结合,形成RNP复合物。这个复合物能够识别并结合到基因组中与sgRNA互补的特定DNA序列。2.**PAM序列识别**:SpCas9需要一个称为原间隔子相邻基序(PAM)的特定序列作为识别目标DNA的先决条件。对于SpCas9,这个PAM序列通常是5'-NGG-3'。3.**DNA切割**:一旦RNP复合物与目标DNA结合,SpCas9就会在PAM序列的3个碱基对的上游位置切割DNA双链,产生一个双链断裂(DSB)。4.**引发DNA修复**:DNA双链断裂触发细胞的DNA修复机制,包括同源定向修复(HDR)和非同源末端连接(NHEJ)。研究人员可以利用这些修复机制来插入、删除或替换特定的DNA序列。5.**基因修改**:通过HDR,可以在断裂的DNA两端引入特定的DNA模板,从而实现精确的基因编辑。而NHEJ通常会导致小的插入或缺失(indel),这可以用来产生基因的敲除或敲入。6.**提高编辑效率**:为了提高SpCas9的编辑效率,研究人员可能会使用优化的sgRNA设计、蛋白质工程或嵌合融合蛋白等策略。

pA-Tn5转座酶的高活性是其重要特性之一,这种高活性主要来源于以下几个方面:1.**转座酶突变体**:pA-Tn5转座酶是由Tn5转座酶的高活性突变体构成的。这种突变体相比野生型Tn5转座酶,在体外的转座效率显著提高,通常提升1000倍以上。2.**ProteinA融合**:pA-Tn5转座酶将ProteinA与高活性Tn5转座酶融合,这种融合不仅保留了Tn5转座酶的高效DNA切割能力,还通过ProteinA的抗体结合特性,提高了对特定DNA序列的靶向能力。3.**转座随机性**:pA-Tn5转座酶能够在整个基因组上实现随机的DNA切割,这为高通量测序提供了广的覆盖度。4.**稳定性**:高活性的pA-Tn5转座酶在各种实验条件下都能保持稳定,包括在不同的温度和pH值条件下。5.**插入位点易测序**:pA-Tn5转座酶产生的DNA片段具有明确的插入位点,这些位点容易被高通量测序技术识别和分析。6.**高效片段化**:在CUT&Tag等实验中,pA-Tn5转座酶能够高效地实现目标蛋白结合DNA的片段化,为后续的测序和分析打下基础。7.**低细胞投入量**:由于其高活性,pA-Tn5转座酶允许从极少量的细胞中进行实验,如单细胞水平的研究。

将含有重组质粒的表达载体转化到宿主细胞中,通常是大肠杆菌或其他合适的细胞系。

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在基因编辑中,除了NLS-Cas9-EGFPNuclease,还有多种技术可以提高编辑的特异性,这些技术包括:1.**高保真Cas9变体**:通过工程化改造Cas9蛋白,例如使用SpCas9-HF1或eSpCas9等高保真变体,可以减少脱靶效应,提高特异性。2.**碱基编辑器(BaseEditors)**:这类编辑器可以在不产生DNA双链断裂的情况下直接在特定位置进行单个碱基的转换,从而减少非目标编辑。3.**引导编辑器(PrimeEditors)**:由哈佛大学刘如谦教授团队开发的引导编辑器可以在不依赖DNA双链断裂和同源定向修复的情况下,实现精细的基因组编辑。4.**CRISPRi和CRISPRa**:这两种技术分别用于抑制或激起特定基因的表达,而不切割DNA,从而减少了脱靶风险。5.**新型CRISPR系统**:例如CRISPR/Cas12j和CRISPR/CasΦ,这些系统可能具有不同的PAM序列要求和更高的特异性。6.**AI辅助设计**:利用人工智能预测和优化sgRNA的设计,以减少脱靶效应。7.**优化递送系统**:改进CRISPR组分的递送方法,例如使用核糖核的蛋白(RNP)复合物,可以提高编辑效率和特异性。8.转座子编辑系统:利用转座子进行基因组编辑,可以在不依赖DNA双链断裂的情况下实现大片段DNA序列的插入。

SpCas9-NLS的应用范围广泛,可用于细胞内的CRISPR/Cas9系统介导的基因编辑。Recombinant Human JAM-A Protein,His Tag

牛痘DNA拓扑异构酶I可以用于PCR产物的克隆,通过其识别序列在引物设计中引入,实现扩增后的DNA片段连接 。Recombinant Cynomolgus LY6G6DProtein,His Tag

pA-Tn5转座酶是通过将ProteinA与Tn5转座酶进行融合来构建的。ProteinA是一种来源于金黄色葡萄球菌的蛋白质,它具有高亲和力结合大多数哺乳动物IgG抗体的Fc片段的能力。Tn5转座酶是一种能够识别特定DNA序列并在基因组上进行“剪切-粘贴”或“复制-粘贴”的酶。融合ProteinA的目的是为了在实验中实现对特定蛋白质的靶向。下面是pA-Tn5转座酶融合的一般步骤:1.**基因克隆**:首先,将Tn5转座酶的基因和ProteinA的基因克隆到一个表达载体中。这通常涉及到分子克隆技术,如PCR扩增、限制性内切酶消化和连接酶连接。2.**融合蛋白设计**:设计一个融合蛋白,其中ProteinA的基因序列和Tn5转座酶的基因序列通过一个短的连接肽(LinkerPeptide)相连。这个连接肽通常包含几个氨基酸残基,以确保两个蛋白部分在融合后仍能保持各自的构象和功能。3.**表达载体构建**:将融合基因插入到适合的表达载体中,这个载体应该包含适当的启动子、标记基因(如抗性基因)和终止子,以确保融合蛋白在宿主细胞中得到高效表达。4.**宿主细胞表达**:将构建好的表达载体转化到宿主细胞(如大肠杆菌)中,通过诱导表达融合蛋白。Recombinant Cynomolgus LY6G6DProtein,His Tag