内源蛋白表达

提升体外蛋白表达效能的关键技术路径包括：裂解物工程化改造： CRISPR敲除核酸酶/蛋白酶基因增强稳定性，或过表达分子伴侣（如GroEL/ES）改善折叠；能量再生系统强化： 耦合葡萄糖脱氢酶与ATP合成酶模块，实现ATP持续再生；膜蛋白表达突破： 添加脂质纳米盘（Nanodiscs）提供类膜环境，促进跨膜结构域正确折叠；高通量筛选适配： 微流控芯片实现万级反应并行运行，单次筛选规模超越传统细胞方法。这些策略共同推动该技术向 更高效率、更低成本、更广适用性演进。用微流控技术整合裂解物分配\DNA模板加载及反应监测模块可在​​单张芯片上并行执行千次蛋白表达反应​​.内源蛋白表达

在合成生物学中，无细胞蛋白表达技术是构建人工细胞和基因电路的he xin工具。研究人员通过混合不同物种（如大肠杆菌+哺乳动物）的裂解物，创建杂合翻译系统，以实现跨物种蛋白的协同合成。该技术还支持无细胞基因线路的快速原型设计，例如将CRISPR组分与报告蛋白共表达，用于体外诊断工具的开发。由于摆脱了细胞膜的限制，CFPS可直接整合非生物元件（如合成聚合物或纳米材料），推动人工合成生命和生物-非生物杂合系统的前沿研究。无细胞蛋白表达技术可快速表达膜蛋白（如GPCRs、离子通道）用于药物靶点研究，解决了此类蛋白在细胞内难表达、易沉淀的问题。在诊断领域，基于CFPS的体外转录-翻译系统被整合到便携式设备中，用于现场检测病原体核酸（如埃博拉病毒），实现“样本进-结果出”的快速诊断。此外，该技术还能合成定制化抗原，用于抗体库筛选或个性化cancer疫苗开发。定制蛋白表达上调体外蛋白表达作为​​现代分子生物学的重要工具之一​​。

从实验室走向产业化，无细胞蛋白表达技术还面临多重障碍。规模化生产时，反应体系的均一性和重复性难以保证，且大规模制备高活性裂解物的成本效益比仍需优化。在下游纯化环节，由于反应混合物中含有大量核酸、酶和其他细胞组分，目标蛋白的分离纯化步骤比传统方法更复杂。此外，目前大多数CFPS工艺仍处于分批反应模式，连续化生产设备的开发滞后，限制了其在工业流水线中的应用潜力。尽管存在这些挑战，随着微流控技术、人工智能优化反应条件等新方法的引入，CFPS技术正在逐步突破这些产业化瓶颈。

eProtein Discovery系统：一种将无细胞蛋白合成与数字微流控相结合的快速蛋白质原型系统。

传统的蛋白质表达纯化流程十分依赖人工操作，并且往往需要几周甚至更久。无细胞蛋白表达的兴起可将这一时间缩短至十几个小时，但是仍需要现进行表达载体的制备，体外扩增和高通量蛋白表达然后再进行筛选等多步操作。Nuclera将这些复杂的流程集成到eProtein Discovery系统。该系统使用基于数字微流控的智能卡盒、无细胞蛋白质合成和荧光蛋白检测技术，使研究人员更容易大规模获取高质量蛋白质。 大肠杆菌裂解物添加含T7启动子的线性DNA后，利用其​​高密度核糖体​​快速启动蛋白表达。

相较于原核表达体系，真核体外蛋白表达的he xin优势在于具备部分翻译后修饰能力，但 关键修饰途径仍存在明显局限。在缺乏内质网-高尔基体转运机制的情况下，糖基化修饰通常终止于高甘露糖型（Man₅GlcNAc₂）阶段，无法合成复杂双触角唾液酸化糖链。这一缺陷直接影响zhi liao性抗体的抗体依赖性细胞介导的细胞毒性（ADCC）效应。同时，裂解物中二硫键异构酶（PDI）与分子伴侣（如BiP）的活性不足，导致含多对二硫键的蛋白错误折叠率升高40%-60%。为克服此瓶颈，需在裂解物中外源性添加重组糖基转移酶复合体（如GnT-I/GnT-II/FUT8）以重构修饰途径，并通过优化氧化还原电势（Eh=-230 mV至-280 mV）改善二硫键形成效率。体外蛋白表达的这些修饰缺陷是目前制约其应用于功能性糖蛋白生产的主要因素。从模板添加到获得功能性体外表达蛋白只需6小时​​，而HEK293系统需两周。定制蛋白表达上调

我们需要先​​构建蛋白表达载体​​，再转染细胞。内源蛋白表达

体外蛋白表达系统的明显缺陷在于 缺乏真核细胞器结构，导致关键翻译后修饰难以实现：糖基化不完整性： 裂解物中缺乏高尔基体转运机制，只能生成高甘露糖型等简单糖链，无法合成复杂双触角N-糖；磷酸化/乙酰化失衡： 激酶/磷酸酶网络不完整，使信号通路蛋白的修饰状态与生理条件差异明显；二硫键错配风险： 氧化还原环境调控不足导致多二硫键蛋白错误折叠率升高。这些局限使体外蛋白表达在 zhi liao性抗体等需精确修饰的蛋白生产中应用受限。内源蛋白表达