如何观察纺锤体呢?
在普通光学显微镜下,人类卵母细胞是半透明的,无法对纺锤体的结构进行观察和分析。传统方法是用一种特异的DNA荧光染料对卵母细胞染色,在紫外光下可显示纺锤体,这种免疫荧光方法对卵母细胞有损伤,不能应用于临床。为了更好的观测纺锤体,美国海洋生物学实验室的R.Oldenbourg等利用纺锤体的双折射特性,开发出偏振光显微镜。现今,偏振光显微镜已经发展成为一种无创性的观察和分析纺锤体动态结构的显微观测系统,我们也叫它纺锤体观测仪。它不仅能对双折射性纺锤体信号的有无进行定性分析,还能对信号的强弱进行定量分析。 纺锤体微管的动态不稳定性是其功能的基础。香港双折射性纺锤体起偏器
在生殖医学与辅助生殖技术的快速发展中,卵母细胞的冷冻保存技术显得尤为重要。然而,卵母细胞,尤其是其内部的纺锤体结构,对低温环境极为敏感,冷冻过程中的损伤往往影响解冻后卵母细胞的存活率及发育潜能。偏光成像技术,特别是Polscope偏振光显微成像系统,结合了液晶可变减速器、电子成像及数码成像技术,能够捕捉到具有双折性特征的细胞结构,如纺锤体。纺锤体由微管等高分子物质有序排列而成,这些物质能够使偏振光发生折射现象,从而被检偏器捕捉并通过偏振光显微镜观察。这一技术无需对细胞进行固定和染色,能够动态评估卵母细胞的质量与纺锤体的相关性,为卵母细胞冷冻保存的研究提供了新的手段。深圳纺锤体实时成像纺锤体Oosight Meta纺锤体微管的动态变化是细胞分裂过程中引人注目的现象之一。
多极纺锤
在有丝分裂时纺锤体一般有二个极。但是在多精入卵的卵细胞、肿瘤细胞、培养的HeLa细胞、杂种细胞等,随着条件不同可形成有3、4个或者更多个极的纺锤体。当存在多极纺锤体时,染色体的后期分配便不规则,可形成几个小核。用低浓度的秋水仙碱等药物处理也能诱导出同样的变化。木贼等特殊的植物体或胚乳细胞,往往在分裂初期形成多极纺锤体,及至分裂中期多数可恢复为二个极。
长期以来,科学家认为在哺乳动物胚胎的***次细胞分裂过程中,只有一个纺锤体负责将胚胎染色体分配到两个细胞中。但欧洲研究人员利用小鼠开展的**近实验观察发现,这个过程中实际上有两个纺锤体,分别负责来自父亲和母亲的染色体[2]。
双纺锤体的形成可能部分解释了为什么哺乳动物在早期发育阶段(胚胎*初的几次细胞分裂中)会有非常高的错误率。如果纺锤体的两极没有对齐和融合,那么,受精卵的遗传物质可能会被拉向3个或4个方向,而不是2个。而这种错误会导致拥有多个细胞核的细胞产生,从而终止胚胎发育。双纺锤体理论的提出提供了一种先前未知的机制。接下来需要探讨的是双纺锤体是否在人类中也发挥相同的作用。因为,这将为研究如何改善人类不育***提供非常有价值的信息[3]。
选择合适的冷冻保护剂是减少冷冻损伤的关键。然而,不同浓度的冷冻保护剂对MI期卵母细胞纺锤体的影响各异,需要通过大量实验进行优化。此外,冷冻保护剂的渗透性和毒性也是需要考虑的因素。冷冻和解冻过程中的温度控制、时间控制以及操作手法等都会对MI期卵母细胞的纺锤体造成影响。因此,需要不断优化冷冻和解冻程序,以减少对纺锤体的损伤。近年来,研究者们通过不断尝试和优化冷冻保护剂的配方,取得了进展。例如,一些研究表明,使用高浓度的蔗糖作为冷冻保护剂可以提高MI期卵母细胞的存活率和纺锤体稳定性。此外,还有一些新型冷冻保护剂如乙二醇、丙二醇等也被应用于MI期卵母细胞的冷冻保存中。纺锤体的功能异常可能导致细胞分裂错误,引发遗传疾病。
卵母细胞冷冻保存主要采用两种方法:慢速冷冻法和玻璃化冷冻法。相较于传统的慢速冷冻法,玻璃化冷冻法因其更高的解冻存活率和妊娠成功率而逐渐成为主流技术。玻璃化冷冻法的基本原理是将含有生物样本的溶液在极短的时间内(如几分钟内)冷却至液氮温度,使溶液在凝固点以下形成无冰晶的半固体或固体状态。这种方法避免了冰晶形成对细胞结构的破坏,从而减少了冷冻损伤。在卵母细胞冷冻保存中,玻璃化冷冻法通过优化冷冻保护剂的浓度和冷冻速率,使卵母细胞在冷冻过程中保持其结构的完整性。纺锤体在细胞分裂中扮演关键角色,确保遗传物质均等分配。美国Hamilton Thorne纺锤体加热台
纺锤体在细胞分裂过程中展现出惊人的自我组装能力。香港双折射性纺锤体起偏器
在生殖医学领域,卵母细胞的冷冻保存技术一直是研究的热点之一。尤其是针对卵母细胞内部高度复杂且精细的纺锤体结构,其冷冻过程中的稳定性与完整性直接关系到解冻后卵母细胞的存活率及发育潜能。纺锤体作为卵母细胞内部的关键结构,由微管等高分子物质有序排列而成,具有双折射性。这种特性使得纺锤体在偏振光下能够呈现出独特的形态和特征,从而被Polscope等偏振光显微镜捕捉并观察。双折射性纺锤体的形态、稳定性和完整性对于卵母细胞的正常减数分裂及胚胎发育至关重要。香港双折射性纺锤体起偏器