膜片钳技术的应用范围:①膜片钳技术在通道中的研究;②与药物作用有关的心肌离子通道研究;③对离子通道生理与病理作用机制的研究;④对单细胞形态与功能关系的研究;⑤对药物作用机制的研究;⑥在心血管药理方面的研究;⑦创新药物研究与高通量筛选的研究;⑧在神经科学中的研究。现如今,膜片钳技术已经大为普及,并普遍活跃在离子通道相关的研究当中。也许未来有1天,膜片钳技术会过时,但两百年来的探索历程,数代学者们的心血,以及它在科学研究中的功绩会一直被铭记。膜片钳使用操作注意:拉制仪提前预热(至少30min)。且用完及时关闭。广州细胞生物学膜片钳研究方案
膜片钳技术基本原理与特点:又由于玻璃微电极管径很小,其下膜面积光约1 μm2,在这么小的面积上离子通道数量很少,一般只有一个或几个通道,经这一个或几个通道流出的离子数量相对于整个细胞来讲很少,可以忽略,也就是说电极下的离子电流对整个细胞的静息电位的影响可以忽略,那么,只要保持电极内电位不变,则电极下的一小片细胞膜两侧的电位差就不变,从而实现电位固定另外,高阻封接技术还很大降低了电流记录的背景噪声,从而戏剧性地提高了时间、空间及电流分辨率,如时间分辨率可达10 μs、空间分辨率可达1平方微米及电流分辨率可达10-12 A。厦门细胞生物学电生理膜片钳应用全自动膜片钳系统技术指标:扩展功能多。配套扩展设备丰富,如内灌流系统、脂质体制备器等。
膜片钳的数据如何处理:全细胞式膜片方式使细胞内与浴槽之间的漏流极少。电极本身阻抗(1~10mω)与细胞封接后的阻抗相比较低,这种低接触阻抗使单管电压钳容易实现。电极管内与细胞之间弥散交换与平衡快,因而容易控制细胞内液的成分。细胞钳记录的是许多通道的平均电流,有利于综合分析。如果有目的地将膜电位钳制在某一程度,可做到选择性抑制某些通道的活性而只记录某种通道电流的总和,并可在同一细胞上观察几种不同通道的情况。通过改变内部介质,如改变电极液成分,或在电极液中加入所需药物,通过渗透很快改变胞浆成分并达到平衡,该手段在全细胞记录中广泛应用。
膜片钳技术操作方法:实验前准备:打开总电源及稳压电源,打开电脑、放大器,并开启程序软件,新建数据文档并准备开始试验;用P97微电极拉制仪拉制玻璃电极若干备用;检查减震台的减震效果,打开倒置显微镜,监视器和微操备用,取-血细胞将其中玻片取出放入小培美血中,置于倒置显微镜下,于低倍镜下寻找状态良好的细胞,并转入高倍镜下再次确认细胞状态及贴壁情况等,确认细胞后,取电极一根充灌电极内液,弹出气泡,然后套入银丝并插入探头中扭紧旋钮,用注射器管道给电极一点点正压,将电极入水,入水后,查案入水电阻,要在4-8M左右的电极才可以使用,通过调节微操,使电极不断向下接近细胞,待电极尖锐端逐渐变清晰并且将要接近细胞时停止向下,然后把电极移到细胞上方调节放大器上的调零旋钮以保证基线在零水平。全自动膜片钳系统技术指标:软件的功能全部,可按照操作者设定的参数方案自动执行实验。
膜片钳电生理技术服务记录的几种形式:全细胞记录构型(whole-cell recording) 高阻封接形成后,继续以负压抽吸使电极管内细胞膜破裂,电极胞内液直接相通,而与浴槽液绝缘,这种形式称为“全细胞”记录。它既可记录膜电位又可记录膜电流。其中膜电位可在电流钳情况下记录,或将玻管连到标准高阻微电极放大器上记录。在电压钳条件下记录到的大细胞全细胞电流可达nA级,全细胞钳的串联电阻(玻管和细胞内部之间的电阻)应当补偿。任何流经膜的电流均流经这一电阻,所引起的电压降将使玻管电压不同于细胞内的真正电位。电流愈大,愈需对串联电阻进行补偿。膜片钳技术是用来研究单个离体的活细胞、组织切片或细胞膜片离子流的电生理实验技术。莆田神经生物学电生理膜片钳网站
膜片钳技术在可兴奋细胞如神经元、心肌细胞、肌纤维和胰腺细胞的研究中起至关重要的作用。广州细胞生物学膜片钳研究方案
膜片钳实验常见问题及解决方法:膜片钳技术是电生理记录的常用手段,目前在科学研究中使用越来越普遍。但在具体膜片钳实验操作的过程中,总会遇到各种各样的问题,对实验人员造成很多困扰。本次讲座主要从实验角度出发,以简单,实用的原则,着重讲解实验中遇到的各种问题,以及解决方法。从选择实验样本开始,按照一般实验进行的顺序,逐步延伸,一直到如何搭建自己个性化的膜片钳系统,使大家对膜片钳的基础知识以及膜片钳实验中遇到的各种典型问题及解决办法有系统的了解。广州细胞生物学膜片钳研究方案
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