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所用仪器为bio-rad的化学发光凝胶成像系统。结果见图1中c和d，可以看出，通过免疫印迹(westernblot)的方法证明了gm20541蛋白在小鼠脑、肝脏、视网膜、心脏、肾脏以及脾中均有表达。实施例2本实施例以小鼠为目标动物，对本发明提供的视网膜色素变性疾病模型的构建方法进行说明，gm20541基因敲除的路线如图2所示，具体操作如下：基因敲除小鼠获取步骤：1将与小鼠gm20541基因同源的5’臂、含有报告基因gfp的表达框、有neo抗性基因的表达框、两端有同向排列loxp位点的第3外显子和3’端臂克隆到bac载体(图2)以用于替换欲敲除的gm20541基因第3个外显子；2利用dna同源重组技术将gm20541基因中的第3个外显子替换，得到gm20541基因条件性敲除的小鼠胚胎干细胞；3利用步骤2得到的胚胎干细胞制备得到含gm20541基因敲除细胞的嵌合体小鼠(图2)；4将步骤3得到的嵌合体小鼠和野生型小鼠交配繁育，在后代中筛选出gm20541基因敲除的杂合子小鼠(图2)。鉴定：实施例2中长距离pcr鉴定阳性子一代鼠的实验结果，扩增5’端长臂使用引物对gm5’lrf和sa3’r，扩增产物为。gm5’lrf:5’-ggcaggatcttcacctgttgaccaacatgcct-3’；sa3’r:5’-ccaaccccttcctcctacatagttggcagt-3’。结果见图3中a。大脑中动脉(MCA)为临床上发生脑缺血损伤常见的部位之一。哪里有动物模型造模

SD大鼠脑缺血致脑梗死模型【材料】水合氯醛、线栓直径（体重250-300g）【方法】1、10％水合氯醛（35mg/kg）腹腔注射麻醉。2、仰卧位固定，颈正中线切口，分离肌肉和筋膜，分离左侧颈总动脉（CCA）、颈外动脉（ECA）和颈内动脉（ICA）。3、微动脉夹暂时夹闭颈内动脉（ICA），活扣结扎近心端颈总动脉（CCA）、颈外动脉（ECA）打双结，在双结中间剪开小口插入线栓。4、将拴线插入到颈内动脉（ICA），用眼科镊轻推拴线，以颈外动脉（ECA）和颈内动脉（ICA）分叉处为参考位置。5、栓线插入预刻深度，感到有阻力，说明栓线已到达脑中动脉（MCA）,打结固定栓线。6、血管外的栓线不要留得过长，1h后拔出栓线，缝合伤口，单笼饲养观察。注：前两三天老鼠会萎靡，不进食，注意不要，老鼠无死亡即可。西藏模式动物模型建模胆管结扎诱导炎症性肝损伤和肝纤维化小鼠模型。

应根据所检测指标的要求，需采取不同策略处理。在如今分子生物学当道的现实背景下，动物实验除了对实验动物的体征及生理指标进行的监控外，各种分子检测甚至是组学检测也开始大行其道，动物实验结束之后的机制研究成为了实验的重头戏。一般来说，动物实验检测对象主要包括：（1）体液中各类因子定性及定量检测由于此类检测对象多为蛋白及各类小分子物质，因此在取样过程中应注意防止此类物质降解，在获取后，应及时置于温（≤-80℃）进行保存，在后续实验过程中，也应当注意保存条件的稳定性，避免反复冻融。常用的方法便是酶联免疫吸附测定（ELISA），除此之外，可利用生化分析仪及不同检测方法的试剂盒（比色法、比浊法等）方法对各类生化指标及因子进行定性及定量检测。（2）组织病理、生理变化及免疫组化检测常用的病理检测多使用H&E染色对细胞质及细胞核进行染色标记，以观察细胞变化。除此之外，许多特殊染色也在病理生理变化中得到了应用，如利用Masson染色检测组织纤维化病变，Nissl染色检测神经元损伤，β-半乳糖甘酶染色检测细胞衰老等。此外，还可以通过免疫组化技术对某些特异性标记物进行免疫显色检测，达到原位定性或定量检测的目的。。

把膜先用TBST泡洗两遍再用5%脱脂奶粉或者BSA室温封闭1-2小时。注意一定要让蛋白面充分接触封闭液。2、孵一抗脱脂奶粉封闭的话，要用TBST泡洗三遍再转移至一抗溶液中，BSA封闭的可以直接转移至一抗中。如果膜的宽(膜是一个长方形，这里的宽与长相对应)不大于8毫米，我习惯置于15毫升离心管中孵育，两条膜"背对背"式放置于一个管子里(3毫升液体即可)。如果大于8毫米，就用普通的5格的一抗孵育盒(4毫升即可)。4度过夜，一般是12-18个小时，注意放置水平，用摇床。内参等蛋白丰度很高的如果孵久了可能出现条带连在一起的情况，这时可以缩短孵育时间或者降低一抗的浓度。六、孵二抗显影1、孵二抗室温一个小时足矣。这步要注意的是建议用5%BSA或者脱脂奶粉稀释二抗，这样背景会干净许多。也要注意膜的蛋白面要充分接触二抗溶液，我们一般一条膜一个槽地孵。2、显影这一步有个细节可能有些同学没注意到，就是ECL发光液要与HRP反应一分钟后显影效果才会更好，还有要注意的是显影液要均匀覆盖，一般第二次显影(加新的显影液)比一次好看。脂多糖（LPS）联合烟熏法致慢性阻塞性肺部疾病小鼠模型。

基因/蛋白质表达定性或定量检测在进行分子检测的过程中，保持核酸和蛋白质的完整性至关重要，因此在取样过程中，应尽量避免核酸及蛋白质的降解。如不注意采样过程，将会导致样本中的核酸及蛋白质的无差别降解，严重影响后续分子检测结果。在条件允许的情况下，组织样本在离体后应立刻装入冻存管内，并立即放入液氮中进行冷冻。在RNA提取样本的保存过程中，可以选择非冷冻型RNA保存液或Trizol试剂进行RNA酶的抑制。针对蛋白质提取样本的保存，我们同样可以使用商品化的蛋白酶抑制剂进行短期处理。聚合酶链式反应（PolymeraseChainReaction，PCR）及免疫印迹（Westernblotting，WB），这两种实验手段是分子生物学检测中不可或缺的一部分，也是发表论文至关重要的分子检测数据。PCR主要用来对基因在基因组层面或转录层面的变化进行定性或定量检测，而WB则主要用来对某一蛋白质的表达进行定量检测。（4）转录组学、蛋白质组学及代谢组学检测随着检测水平及相关产业的不断发展，各类组学检测的价格降低，实验设计中也常常运用组学检测来提升实验设计的档次。在我们进行转录组学及蛋白质组学的检测过程中，同样是要首先确保目标RNA或蛋白质的片段完整性。它主要影响身体内的大中动脉，如冠状动脉、颈动脉、脑动脉和肾动脉等，其发病机制的主要过程。西藏兔动物模型构建

小鼠卵巢早衰POF模型。哪里有动物模型造模

我们知道WB实验步骤繁琐，一次实验历时也不短，从提蛋白到显影结束可能要三天，我们就讲一下这里面的一些关键环节。一、蛋白提取及变性1、提取蛋白很多经验丰富的WB实验者都深有体会，蛋白提取是影响结果重要的环节之一。该过程重要的是防降解和保证蛋白浓度不要太低。防降解主要有两点，一是裂解前注意保持样品处于低温环境中，二是裂解时加入足够的蛋白酶抑制剂。我们习惯先用冰冷的PBS做心脏的体循环灌注，然后冰上取脑，分离各脑区(嗅球，皮层，海马，中脑，小脑，延髓，丘脑，纹状体)后置于，用液氮速冻后转移至-80度冰箱长期保存。接着是保证蛋白浓度，即要加入适量的裂解液，加太少会使蛋白提取不充分，加太多会让蛋白浓度太低，一般经验是这样的，细胞样品例如一个六孔板的细胞加60微升的裂解液，动物组织的话每毫克组织加10微升裂解液。还要加上超声破碎处理，具体方案见讨论部分。如果没有超声破碎仪，那就用1毫升注射器不断抽吸，冰上反复抽吸1分钟左右，注意不要产生过多气泡。(需要灌注取材的视频可以私聊获取，由于文件过大，又比较血腥，不宜直接放到文章里。)2、蛋白变性加入上样缓冲液后100摄氏度煮10分钟，这里的上样缓冲液有两种可选。哪里有动物模型造模