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RNA甲基化修饰（m6A）研究RNA甲基化修饰约占所有RNA修饰的60%以上，而N6-甲基腺嘌呤（N6-methyladenosine,m6A）是高等生物mRNA和lncRNAs上为普遍的修饰。目前发现microRNA，circRNA,rRNA,tRNA和snoRNA上都有发生m6A修饰。m6A修饰主要发生在RRACH序列中的腺嘌呤上，其功能由“编码器(Writer)”、“消码器(Eraser)”和“读码器(Reader)”决定[1]。“编码器(Writer)”即甲基转移酶，目前已知这个复合物的成分有METTL3，METTL14,WTAP和KIAA1429；而ALKBH5和FTO作为去甲基酶（消码器）可逆转甲基化；m6A由m6A结合蛋白识别，目前发现m6A结合蛋白（读码器）有YTH结构域蛋白（包括YTHDF1,YTHDF2,YTHDF3，YTHDC1和YTHDC2）和核不均一蛋白HNRNP家族（HNRNPA2B1和HNRNPC）。m6A酶系统METTL3是早先被鉴定为结合SAM的组件，其缺失引起小鼠胚胎干细胞、Hela细胞和HepG2细胞中m6Apeaks的减少。METTL3及其同源蛋白METTL14定位在富含剪切因子的细胞核内亚细胞器－核小斑（Nuclearspeckle）上，显示ｍ６Ａ修饰可能和ＲＮＡ的剪切加工相关。WTAP与METTL3–METTL14二聚体相互作用，并共定位于核小斑，影响甲基化效率，参与mRNA剪。而KIAA1429作为候选的甲基转移酶复合体的新亚基。可以稳定的WB精髓与经验分享。云南动物科研技术服务服务

我们知道WB实验步骤繁琐，一次实验历时也不短，从提蛋白到显影结束可能要三天，我们就讲一下这里面的一些关键环节。一、蛋白提取及变性1、提取蛋白很多经验丰富的WB实验者都深有体会，蛋白提取是影响结重要的环节之一。该过程重要的是防降解和保证蛋白浓度不要太低。防降解主要有两点，一是裂解前注意保持样品处于低温环境中，二是裂解时加入足够的蛋白酶抑制剂。我们习惯先用冰冷的PBS做心脏的体循环灌注，然后冰上取脑，分离各脑区(嗅球，皮层，海马，中脑，小脑，延髓，丘脑，纹状体)后置于，用液氮速冻后转移至-80度冰箱长期保存。接着是保证蛋白浓度，即要加入适量的裂解液，加太少会使蛋白提取不充分，加太多会让蛋白浓度太低，一般经验是这样的，细胞样品例如一个六孔板的细胞加60微升的裂解液，动物组织的话每毫克组织加10微升裂解液。还要加上超声破碎处理，具体方案见讨论部分。如果没有超声破碎仪，那就用1毫升注射器不断抽吸，冰上反复抽吸1分钟左右，注意不要产生过多气泡。(需要灌注取材的视频可以私聊获取，由于文件过大，又比较血腥，不宜直接放到文章里。)2、蛋白变性加入上样缓冲液后100摄氏度煮10分钟，这里的上样缓冲液有两种可选。浙江组织科研技术服务实验室可以普遍应用于生物医学研究、药物筛选、肿、瘤诊断等领域。

用途基因功能研究、免/杀伤/增殖等、抗体活性筛选（细胞水平的结合和阻断）、CAR分子的杀伤活性评价。材料与仪器（以慢pMSCV载体为例）包含目的基因和eGFP-Tag的pMSCV质粒、带有eGFP-Tag的pMSCV空载质粒、GAG质粒、VSV质粒、Puromycin、Polybrene、Lipo3000、HEK293T细胞、opti-MEM、DMEM、FBS、双抗、μm的滤膜、荧光显微镜等。步骤1、基因的构建1)根据目的基因mRNA编码区设计引物，分别在引物两端加入酶切位点EcoRI和BglII。2)从细胞中提取目的基因mRNA，然后逆转录成cDNA，然后从cDNA里面用引物把目的基因的CDS区扩增出来。PCR扩增出带有酶切位点的目的基因编码区序列，连接至pMD19-T载体后转化至感受态DH5α，分别进行菌落PCR鉴定和酶切鉴定。3)使用EcoRI和BglII双酶切下目的基因序列，电泳割胶回收纯化，连接到pMSCV-eGFP载体。再次转化到感受态DH5α，菌落PCR鉴定和酶切鉴定成功后，送至公司测序、鉴定。4)鉴定成功后，将质粒转化至感受态DH5α中，并进行无内质粒抽提。GAG质粒和VSV质粒同样可以转化至感受态DH5α中，并进行无内质粒抽提。质粒抽提后冷冻于-20℃保存。2、慢包装1)使用DMEM完全培养基培养6cm皿HEK293T至汇合度为70~80%。

固定的目的①保持其原有状态：使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变为不溶性物质，迅速防止、细胞的死后变化，防止自溶与，防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态结构，使之尽量保持生前的状态和结构。②以便染色后易于鉴别和观察：不同成分对染料有不同的亲和力，以便染色后易于鉴别和观察。③使块硬化，便于制作薄片（块在脱水、包埋、切片、染色等过程中不易损坏）。（3）固定液固定液种类：一类是单纯固定液，即只有一种试剂；另一类是混合固定液，由两种或两种以上试剂组成。作为较好的固定液，应有下列特性，首先，有强渗透力，能迅速的渗入内部；其次，不使过度收缩或膨胀，并能使内欲观察的成分得以凝固为不溶性物质；能使达到一定的硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的亲和力。固定液通常使用10%的甲醛溶液。特殊要求的，常需要特殊的固定液，取样之前应做好准备。如眼球样本应使用FAS眼球固定液，脂肪应使用脂肪固定液等。此外，在进行骨样本制备的时候，还应注意提前进行脱钙处理，可根据具体情况选择慢脱钙或快脱钙处理。总的来说，样品的采集是实验中至关重要的一环，如果取样环节出现了偏差，往往会导致后续检测结果的偏移。随着跨学科研究的深入开展，动物疾病模型将在未来发挥更为普遍的作用，成为生命科学、医学等领域研究工具。

m6A研究又有新手段了？赶紧来了解一下吧！栏目：研究动态发布时间：2019-08-14RNA甲基化m6A是如今的研究热点之一,Cell上新发表了一篇介绍不使用m6A抗体的检测mRNAm6A水平的Resource文章......RNA甲基化m6A是如今的研究热点之一，目前主要的研究思路包括差异表达的write，reader和eraser基因分析；m6A抗体检测全转录组甲基化水平；分析m6A甲基化水平变化的靶基因和下游机制研究。而在7月25日的Cell上新发表了一篇介绍不使用m6A抗体的检测mRNAm6A水平的Resource文章，小编时间和大家分享一下。作者开发这一方法的前提是有研究报道了MazF能特异性的识别无修饰的ACA序列并发挥RNA酶活性在ACA之前剪切底物。但ACA序列的个A发生m6A甲基化之后将无法被MazF所识别，如图一所示。图1MazFRNA酶作用示意图根据这一原理，作者将纯化后的mRNA进行MazF酶处理，然后再对打断的RNA进行逆转建库测序。对于无修饰的位点，ACA处被完全剪切，测序reads正好分布于该位点上下游而且比对至该处的上下游reads数是相同的.如图2所示。而甲基化位点的reads会包含上下游的序列。作者开发了MAZTER-MINE软件包专门进行分析（图3）。总的来说，动物疾病模型是一种重要的研究工具，可以帮助科学家们更好地了解疾病的发生机制和开发新方法.宁夏病理科研技术服务实验

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实验样本分类实验一般采取样本有：血液样本、样本和细胞样本。通常，样本采集后，应立即用等渗溶液（PBS或生理盐水）尽量把血液漂洗干净（除非血液也是分析对象），用滤纸或纱布吸干，把样本分切成几分，每份的体积约2个黄豆大小，每份用一个管子装。血液样本的采集应根据不同实验的要求，将会采取不同策略。血清样本：全血中不加抗凝剂，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黄色透明液体。（全血标本室温放置2小时3000rpm/min离心15min）血浆样本：全血中加抗凝剂，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黄色透明液体。（可用EDTA或肝素作为抗凝剂，标本采集后30分钟内于2-8℃，3000rpm/min离心15min）如果是做生化\ELISA等检测可以考虑血浆和血清，根据获得的样本量可考虑分装成100-500μl/管，可避免反复冻融造成的检测误差。生化：建议优先选择血清，其次选择肝素抗凝血浆；ELISA：建议优先选择血清，其次选择肝素或EDTA抗凝血浆；凝血实验：只能选择枸橼酸钠抗凝血浆；血常规：只能选择EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白细胞、血小板等建议用抗凝全血。如果要做流式建议用专门的流式用血液收集管，防止表面抗原的丢失，或者尽快安排就近检测。样本处理取样完后。云南动物科研技术服务服务