西藏C57动物模型实验室

    微波炉中融化后制成1％的琼脂糖胶。取10μlpcr产物于加样孔中，120v恒压琼脂糖电泳15min.用凝胶成像系统成像。图4中a上方是gm20541条件性敲除鉴定结果，wt表示野生型对照，条带大小为223bp；het表示杂合子，有两个条带223bp和358bp；sixko表示纯合子，条带大小为358bp。图4中a下方是six3－cre鉴定结果。six3－cre大小为200bp。根据图4中a的结果，显示所采用的鉴定方法可对新生小鼠的基因型进行有效鉴定。其中，gm20541基因敲除纯合子小鼠即可作为视网膜色素变性疾病模型(后文用sixko或cko表示gm20541基因敲除纯合子小鼠；ctr是指野生型；het是指杂合子)，并进行相关表型的验证。(5)rt-pcr实验分析six3-cre敲除小鼠视网膜中基因敲除效率验证，方法如下：(a)分别分离野生型和突变型小鼠视网膜组织，置于，加入1mltrizol提取液，室温20分钟；(b)加入200μl氯仿，充分混匀，室温静置10分钟；(c)将样品置于4度离心机，10000转离心15分钟；(d)小心吸取上清液，加入等体积异丙醇，充分混匀，10000转离心沉淀rna；(e)75％乙醇清洗析出的总rna，离心再次沉淀，然后晾干加入depc水溶解；(f)提取的总rna用cdna合成试剂盒(invitrogen,waltham,ma,usa)合成cdna。C57BL/6成年鼠肺部通过呼吸机过量通气损伤模型的建立；西藏C57动物模型实验室

    我们知道WB实验步骤繁琐，一次实验历时也不短，从提蛋白到显影结束可能要三天，我们就讲一下这里面的一些关键环节。一、蛋白提取及变性1、提取蛋白很多经验丰富的WB实验者都深有体会，蛋白提取是影响结果重要的环节之一。该过程重要的是防降解和保证蛋白浓度不要太低。防降解主要有两点，一是裂解前注意保持样品处于低温环境中，二是裂解时加入足够的蛋白酶抑制剂。我们习惯先用冰冷的PBS做心脏的体循环灌注，然后冰上取脑，分离各脑区(嗅球，皮层，海马，中脑，小脑，延髓，丘脑，纹状体)后置于，用液氮速冻后转移至-80度冰箱长期保存。接着是保证蛋白浓度，即要加入适量的裂解液，加太少会使蛋白提取不充分，加太多会让蛋白浓度太低，一般经验是这样的，细胞样品例如一个六孔板的细胞加60微升的裂解液，动物组织的话每毫克组织加10微升裂解液。还要加上超声破碎处理，具体方案见讨论部分。如果没有超声破碎仪，那就用1毫升注射器不断抽吸，冰上反复抽吸1分钟左右，注意不要产生过多气泡。(需要灌注取材的视频可以私聊获取，由于文件过大，又比较血腥，不宜直接放到文章里。)2、蛋白变性加入上样缓冲液后100摄氏度煮10分钟，这里的上样缓冲液有两种可选。上海基因敲除动物模型造模通过阿霉素（Adriamycin，ADR）腹腔注射给药（Adriamycin，ADR）试图造成小鼠心衰。

    代谢组学的研究对象大都是相对分子量在1000以内的小分子物质，因此常用的血液样本在取样后，应小心操作，防止溶血，尽快分离出血清，分置于温环境下保存。由于用于病理实验的动物组织采集相对其他样品的采集，操作更繁琐，在处理过程中许多细节容易忽略，造成数据不完美（甚至不能用）。因此接下来将重点介绍组织样品采集的注意事项及其固定。组织样品采集注意事项组织应新鲜，操作时间尽可能短，否则细胞发生死后变化、自融及现象。是动物心脏还在跳动时采集，样本取出后在5分钟以内置于固定液内，避免长时间暴露在空气环境中。组织块尽量小而薄。组织块的厚度以不超过5mm为宜，较为理想的厚度为2mm左右，主要目的是使固定液迅速而均匀的渗入组织块内部。勿使组织块受挤压。在采集过程中，应尽量选择较为锋利的手术器械，如手术刀片等，避免操作过程中挤压挫伤标本。挤压过的组织均不可用。固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜，组织能够在容器内自由移动。尽量保持组织的原有形态。新鲜组织经固定后，或多或少产生收缩现象（如胃肠），为此可将组织展平，以尽可能维持原形。保持组织清洁。组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用生理盐水冲洗。

    应根据所检测指标的要求，需采取不同策略处理。在如今分子生物学当道的现实背景下，动物实验除了对实验动物的体征及生理指标进行的监控外，各种分子检测甚至是组学检测也开始大行其道，动物实验结束之后的机制研究成为了实验的重头戏。一般来说，动物实验检测对象主要包括：（1）体液中各类因子定性及定量检测由于此类检测对象多为蛋白及各类小分子物质，因此在取样过程中应注意防止此类物质降解，在获取后，应及时置于温（≤-80℃）进行保存，在后续实验过程中，也应当注意保存条件的稳定性，避免反复冻融。常用的方法便是酶联免疫吸附测定（ELISA），除此之外，可利用生化分析仪及不同检测方法的试剂盒（比色法、比浊法等）方法对各类生化指标及因子进行定性及定量检测。（2）组织病理、生理变化及免疫组化检测常用的病理检测多使用H&E染色对细胞质及细胞核进行染色标记，以观察细胞变化。除此之外，许多特殊染色也在病理生理变化中得到了应用，如利用Masson染色检测组织纤维化病变，Nissl染色检测神经元损伤，β-半乳糖甘酶染色检测细胞衰老等。此外，还可以通过免疫组化技术对某些特异性标记物进行免疫显色检测，达到原位定性或定量检测的目的。。急性肺损伤(acute lung injury，ALI)。

    可用锇酸或甲醛蒸汽固定。主要用于血液或细胞涂片以及某些薄膜组织的固定。（2）固定的目的①保持其原有状态：使细胞内的蛋白质、脂肪、糖、酶等成分转变为不溶性物质，迅速防止组织、细胞的死后变化，防止自溶与，防止细胞过度收缩或膨胀而失去其原有形态结构，使之尽量保持生前的状态和结构。②以便染色后易于鉴别和观察：不同组织成分对染料有不同的亲和力，以便染色后易于鉴别和观察。③使组织块硬化，便于制作薄片（组织块在脱水、包埋、切片、染色等过程中不易损坏）。（3）固定液固定液种类：一类是单纯固定液，即只有一种试剂；另一类是混合固定液，由两种或两种以上试剂组成。作为较好的固定液，应有下列特性，首先，有强渗透力，能迅速的渗入组织内部；其次，不使组织过度收缩或膨胀，并能使组织内欲观察的成分得以凝固为不溶性物质；，能使组织达到一定的硬度并获得较佳的折光率和对某些染料具有较强的亲和力。固定液通常使用10%的甲醛溶液。特殊要求的组织，常需要特殊的固定液，取样之前应做好准备。如眼球样本应使用FAS眼球固定液，脂肪组织应使用脂肪组织固定液等。此外，在进行骨组织样本制备的时候，还应注意提前进行脱钙处理。四氯化碳诱导急性肝损伤大鼠模型。湖南C57动物模型饲养

卵巢切除致骨质疏松大鼠模型。西藏C57动物模型实验室

    轻微的接触角膜的中心顶端。一通道正极接右眼，二通道正极接左眼。通过针管对双眼滴生理盐水，改善金环电极及角膜的接触效果。保证两个金环电极以相同的角度、方式接触两眼角膜中心正端的相同位置。5记录示波信号确认无误后，关闭暗红光。可以先尝试记录一下暗适应光强为·s/m2的erg检测，确认一下信号的质量：如果双眼的振幅出现了与预期不同的较大差异，建议再次检查金环电极的安装位置。然后依次记录暗适应光强为·s/m2的信号。需要注意的是，完成暗适应·s/m2光强检测后，系统将自动打开背景光。同样的，需要打开定时器，光适应10-15分钟，再记录。6经过光适应后，依次记录光适应·s/m2以及·s/m2光强下波形，记录·s/m2光强下闪烁视网膜诱发电位。结果发现在4个月时，与ctrl(对照)小鼠比较，cko(gm20541基因敲除纯合子小鼠)小鼠的a波和b波在暗适应和光适应条件下均明显降低，表明gm20541敲除后导致视力受损(见图5和图6)。实施例4视网膜石蜡切片h&e染色：对4月龄小鼠的视网膜进行石蜡切片、苏木精-伊红染色法(h&e染色方法)染色，具体操作如下：1)快速取小鼠眼球组织，并置于固定液中固定24h；2)石蜡包埋，切片，厚度为4μm；3)切片常规用二甲苯脱蜡。西藏C57动物模型实验室