肝切除实验动物模型造模方法:大小鼠的肝叶形状和大小不同。因此,切除每个肺叶需要特别注意其独特的形状和血管位置。左外侧叶很容易切除,因为它有一个狭窄的包含门静脉和肝静脉的蒂,并且不与下腔静脉旁肝相连。然而,如果切除***于切除左侧肝外叶(30%切除模型),则必须在肝左门区分离左侧正中门静脉和伴随的肝动脉。
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由于正中叶在腔静脉周围有一个较宽的半基部,切除该叶需要在距腔静脉3mm的距离处进行几次夹持。单纯结扎肝叶的宽基部切除术有很高的风险导致腔静脉收缩和残端肝组织损伤,因为大量结扎容易导致剩余肝组织变形。由于右上叶位于腔静脉上,基部非常宽,并向背侧延伸至右腔静脉旁肝组织,因此技术上**难切除。切除需要小心地将夹钳放置在离腔静脉3毫米的距离处,并使用4或5条穿刺缝线,以避免损伤残端和腔静脉旁肝组织(图6)。由于约70%的下腔静脉旁组织由右上门静脉的一个分支供应,这种潜在的损伤可能对小的残肝非常重要。 实验动物模型构建服务就找英瀚斯。浙江小鼠实验动物模型是什么
裸鼠瘤模型是比较常见和常用的一种瘤动物模型,它在皮下移植瘤瘤模型的建立中起到重要作用。裸鼠瘤模型的接种一般有细胞接种和瘤块接种两种方式。裸鼠移植瘤模型的建立具有建立周期短、成瘤率高、易于操作、成本低的优点。
造模方法:
1、细胞是贴壁细胞,细胞培养在RPMI-1640培养基中细胞传代培养:当细胞长至80-90%时,去除培养基,加入PBS洗1-2次,去除PBS后,加入1ml胰酶消化1-3min后,加入3ml完全培养基中和胰酶终止消化,将消化的细胞转移至15ml离心管中,1000rpm离心5min。倒掉上清后,加入3ml培养基重悬细胞,1:3传代至培养皿中培养。
2、将长到培养皿80%-90%的细胞用胰酶消化下来,1000rpm离心,去除上清,加入完全培养基重悬细胞,将细胞分别种在6孔板中,每孔种1×105个细胞。
3、将细胞进行扩增培养,对细胞进行计数,将数量调整为2×107个细胞/ml。5、8周龄15只裸鼠适应性饲养7天后,随机分为3组,每组分别在右腋皮下接种2×106(100ul/只)细胞。接种约两周后出现结节,每周瘤大小两次。将裸鼠放入鼠笼中正常饲养4周后处死裸鼠,取裸鼠瘤拍照冻存。 黑龙江专业实验动物模型制作英瀚斯生物,提供各种实验动物模型造模。
研究衰老的物理损伤实验动物模型。动物脑血流量老年期较成年期减少20%以上,脑部慢性缺血、缺氧使脑的正常功能受损,出现认知功能障碍等AD病理性改变。由此理论在实验研究中通过长久结扎双侧颈总动脉血管(2VO)建立的缺血性痴呆动物模型,表现出认知功能障碍明显,淀粉样蛋白前体升高、神经元和脑细胞死亡、tau蛋白过度磷酸化、氧化应激反应和产生慢性炎症等AD病理特征。该动物模型病程较长,在行为学表现上如认知功能障碍与AD比较一致,病理上也高度相似,但引起AD的外因在该动物模型中不能体现出来,另外,2VO动物模型手术操作具有一定难度,模型复制后动物存活率低且时间短,不适合给药周期长的实验研究。另外,还有长久性结扎单侧颈总动脉、去胸腺衰老模型和γ射线致衰老模型、控制性皮质撞击模型、液压脑损伤模型等,由于这些模型在造模方法上复杂、难度高、造模后动物容易死亡、且结果不理想,只在个别特殊目的实验中有所应用。
肾小管坏死小鼠模型
【操作步骤】BALB/c小鼠,放置在每升空气中含有5mg的氯仿的环境中,持续3h后,可引起不同程度的肾坏死。
【结果分析】出生46~106d的雄性小鼠发生率可高达90%以上。持续在氯仿气雾中24h,动物肾脏组织学观察,肾***损害且肾小管明显坏死。
急性肾小管坏死大鼠模型
【操作步骤】SD或Wistar大鼠,体重190~250g,实验前置于代谢笼中饲养,记录食物、饮水和尿量。实验时由尾静脉注射**1.0mg/kg。24h后出现急性肾小管坏死表型。
【结果分析】尾静脉注射**24h后,尿量明显减少,尿渗透浓度降低,且出现细胞学的改变,近曲小管的末端部分可见肾坏死灶。
4-硝基儿茶酚等制剂引起的肾坏死模型
【操作步骤】成年雄性SD或Wistar大鼠,实验前置于代谢笼中饲养,测12h的尿量和尿中的酸性磷酸酶、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、谷氨酰脱氢酶的正常排泄水平。可选用下列不同药品给大鼠进行腹腔注射,造模。(1)硝酸钠:2.5mg/(ml·100g);(2)4-硝基儿茶酚:1mg/(ml·100g);(3)4-硝基茶胂酸;2.5mg/(ml·100g);(4)4-氨基儿茶酚:1.5mg/(ml·100g)。用药后12h测定尿量和尿酶量。
【结果分析】肾中毒的大鼠尿量普遍减少。肾组织表现***损害和肾小管明显坏死。 英瀚斯生物,可做实验动物模型行为学分析。
实验动物模型之炎症性肠病模型。炎症性肠病是基因、免疫、饮食、环境等多种因素参与的一种慢性疾病,随着现代的生活方式的改变,炎症性肠病已经越来越普遍,炎症性肠病简单的可以分为溃疡性结肠炎(UC)和克罗恩病(CD)两种,其致残率和致死率呈现持续的上升趋势。为了研究相对应的医疗药物,迄今为止科学研究者已经开发出60多种动物模型,主要可以分为以下几类:化学诱导模型(急性炎症模型,慢性炎症模型),转基因动物模型,自发性疾病模型。英瀚斯生物专业做实验外包服务,一站式医学科研平台。英瀚斯生物,承接大鼠实验动物模型。福建推荐实验动物模型哪家好
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大鼠烫伤模型
(1)复制方法:按30mg/kg体重的剂量经腹腔注射3%戊巴比妥钠麻醉大鼠,根据体重腹部备皮,然后固定于实验台上。将大鼠移近加热自来水的烧杯,将纱布条浸入热水中,待水温恒定于99℃时,取出纱布,立即平铺于待烫部位,以纱布接触大鼠皮肤后计时。
(2)模型特点:大体观察:致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好,有少量红褐色素沉着,皮肤轻微挛缩,表皮光滑。致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好,皮肤瘢痕形成,表面粗糙不平。光镜观察:致伤3s大鼠表皮层次尚清楚,细胞明显肿胀、变性,层次结构尚清楚,细胞核结构不清。表皮内有水疱形成,真皮水肿、间质疏松,胶原纤维断裂,嗜酸性染色性能减退,呈嗜双色性。致伤10s大鼠表皮细胞部分脱落,结构不清,明显变性、坏死,部分细胞已溶解。表皮内有水疱形成,真皮层间质疏松、充血,胶原纤维融合成片,嗜酸性染色性能减退,呈嗜双色性,大部分皮脂腺、汗腺、***被破坏,结构不清,真皮深部可见残余***。皮下组织血管扩张、充血、水肿明显,结构未破坏。上述结果表明,致伤3s大鼠为浅Ⅱ度烫伤,致伤10s大鼠为深Ⅱ度烫伤。 浙江小鼠实验动物模型是什么
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