免疫组化即用型二步法的具体实验流程步骤简介:1、脱蜡、水化组织切片;2、根据所应用的一抗的特殊要求,对组织切片进行预处理;3、0.3%或3%H2O2去离子水孵育5分钟-30分钟,以阻断内源性过氧化物酶,PBS或TBS冲洗;4、滴加一抗,室温或37℃孵育30~60分钟,或4℃过夜,PBS或TBS浸洗3分钟×5次;5、滴加enhangcer增强剂,37℃30min,PBS或TBS浸洗3分钟×5次;6、滴加通用型IgG抗体-Fab段-HRP多聚体,室温/37℃孵育30分钟-1h,PBS/TBS冲洗,3分钟×5次;7、应用DAB溶液显色;8、蒸馏水冲洗、复染、脱水、透明、封片。如何提高免疫组化染色结果的特异性?扬州免疫组化
免疫组化技术的优点:1、特异性强 免疫学的基本原理决定了抗原与抗体之间的结合具有高度特异性,因此,免疫组化从理论上讲也是组织细胞中抗原的特定显示,如角蛋白(keratin)显示上皮成分,LCA显示淋巴细胞成分。只有当组织细胞中存在交叉抗原时才会出现交叉反应。2、敏感性高 在应用免疫组化的起始阶段,由于技术上的限制,只有直接法、间接法等敏感性不高的技术,那时的抗体只能稀释几倍、几十倍;现在由于ABC法或SP法的出现,使抗体稀释上千倍、上万倍甚至上亿倍仍可在组织细胞中与抗原结合,这样高敏感性的抗体抗原反应,使免疫组化方法越来越方便地应用于常规病理诊断工作。3、定位准确、形态与功能相结合 该技术通过抗原抗体反应及呈色反应,可在组织和细胞中进行抗原的准确定位,因而可同时对不同抗原在同一组织或细胞中进行定位观察,这样就可以进行形态与功能相结合的研究,对病理学研究的深入是十分有意义的。扬州免疫组化优化的抗原修复步骤能明显提升免疫组化染色的敏感性和特异性。
免疫组化主要包括抗原修复、抗体染色和结果观察三个主要的步骤。下面将针对每个步骤的原理和操作流程进行详细的介绍。每个步骤的具体的操作流程如下:1.取出已固定的组织样本,将其置于适当的缓冲液当中。2.对于热原修复,将样本加热至适当的温度后(通常为95-100摄氏度),保持一定的时间(通常为15-30分钟)。3.对于酶解原修复,将样本加入含有特定酶的缓冲液当中,孵育一定的时间(通常为30分钟至1小时)。免疫组化是一种利用特异性抗体与抗原结合的方法,在组织和细胞层面上对特定的分子进行定位和检测的技术。
免疫组化的结果判断标准主要涵盖:1、患者基本信息,如姓名、年龄、性别和检查时间,这些信息是判断结果准确性的基础;2、病理图像直观展示病变性质,病理诊断结果明确病变类型和原发部位;3、免疫组化指标是关键,常用英文缩写表示,如CEA、NSE、AFP等。阳性表示相应抗原表达,且“+”越多表达性越高。不同指标有不同意义;4、综合分析是主要,医生需结合患者情况、病理图像、诊断结果和免疫组化指标,并参考其他检查结果和临床表现,进行综合判断。通过荧光或酶标记的二抗,免疫组化在显微镜下直观展示细胞内蛋白分布。
在免疫组化实验中,单克隆抗体和多克隆抗体各有其优缺点,具体如下:单克隆抗体优点:高特异性:单克隆抗体只识别一个抗原表位,因此具有极高的特异性,减少了与其他蛋白的交叉反应。批间一致性:由于单克隆抗体来自同一克隆的B细胞,因此批次间差异小,实验结果的重现性高。背景信号低:在免疫组化实验中,单克隆抗体产生的背景信号通常较低,有利于准确观察目标抗原的表达。单克隆抗体缺点:成本较高:单克隆抗体的制备过程相对复杂,成本也较高。对化学处理敏感:经过化学处理的抗原可能导致单克隆抗体识别的表位丢失,影响实验结果。多克隆抗体优点:成本低廉:多克隆抗体的制备相对简单,成本较低。识别多个表位:能够识别抗原上的多个表位,提高检测的灵敏度。对微小变化容忍度高:由于识别多个表位,多克隆抗体对抗原的微小变化具有更高的容忍度。多克隆抗体缺点:特异性较低:由于识别多个表位,多克隆抗体的特异性相对较低,可能导致与其他蛋白的交叉反应。批间差异大:由于每次免疫使用的动物和抗原成分可能存在差异,因此多克隆抗体批次间差异较大。免疫组化对评估诊断效果有一定意义。台州免疫组化实验流程
免疫组化技术不仅能用于基础研究,也是临床病理诊断不可或缺的方法之一。扬州免疫组化
免疫组化的常见问题分析:1. IHC实验结果显色过深:抗浓度过高或孵育时间过长——降低一抗浓度或减少孵育时间;孵育温度过高——选择4℃或室温孵育。2. 实验结果存在非特异性显色:石蜡切片脱蜡不彻底——延长脱蜡时间;蛋白封闭不充分——增加蛋白封闭时间;组织富含内源性生物素与过氧化物酶——使用相关试剂进行封闭。3. 实验结果显色弱或无染色:抗浓度过低或孵育时间过短——增加一抗浓度或延长孵育时间;组织中无目的抗原的表达;抗种属来源与二抗不匹配。扬州免疫组化