细胞和组织样品处理:准备荧光标记的细胞样品:为实现较佳的图像质量,首先应建立针对目的蛋白和细胞结构的研究,同时将其他一切背景等排除在图像之外。固定和破膜细胞样品用于标记–首先将细胞结构、蛋白和核酸固定,然后使荧光染料和抗体渗入到细胞内部,标记目的靶点。封闭细胞样品,防止荧光标记物与研究无关的蛋白非特异性结合,较大限度提高信噪比。蛋白封闭液有助于减少非特异染色。抗体能够取代封闭蛋白与其表位形成高亲和力结合,而封闭液可防止样品中的低亲和力结合。荧光抗原法是利用已知的荧光标记物来追踪或检查相应抗体的方法。X Hu Nuclei免疫检测
细胞免疫荧光:细胞种板与细胞爬片制备:1) 细胞密度在90%-95%左右,用预热胰酶消化细胞后重悬细胞于完全培养基中,充分吹打,使之成单细胞悬液,计数。2)取细胞培养12孔板,在每个孔放爬片的位置根据爬片的大小,先在每个孔里准备放爬片的位置滴几滴培养基,然后将爬片置于液滴上,压紧,使爬片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起,防止加细胞悬液时爬片漂起,造成双层细胞贴片。根据自己的需要选择合适的细胞密度种入12孔板培养板内。3)24h或者48h后,根据细胞生长速度快慢,观察判断细胞密度,约90%时进行细胞免疫荧光。X Hu Nuclei免疫检测免疫荧光技术可以用于研究食品安全和生物安全。
免疫荧光实验的注意事项:对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从10min到数小时,一般30min已足够。染色温度多采用室温(25℃左右),高于37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2℃的低温,延长染色时间。低温染色过夜较37℃30min效果好的多。
细胞免疫荧光实验注意事项:非特异性染色:是否灭活内源性过氧化物酶;孵育过程中干片;抗原热修复过度。染色过深:一抗浓度过高;染色试浓度过高或孵育时间过长;染色剂浓度过高或孵育时间过长。通常实验室先固定细胞再进行通透,但若检测抗原是水不溶性蛋白,可先通透再固定,这样可以通过通透去除一些水溶性蛋白,进而可降低免疫荧光背景和非特异性信号;建议设阴性对照组,消除由于抗体非特异性结合而产生的背景染色;选择醛类固定液时,保持其新鲜度,较好现配现用,使用不新鲜的醛类固定液自发荧光背景会升高。免疫荧光技术可以用于研究内脏移植和免疫抑制。
免疫荧光技术又称荧光抗体技术,是标记免疫技术中发展较早的一种。它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。很早以来就有一些学者试图将抗体分子与一些示踪物质结合,利用抗原抗体反应进行组织或细胞内抗原物质的定位。免疫荧光技术是标记免疫技术中发展较早的一种.它是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。Coons等于1941年初次采用荧光素进行标记抗体获得成功。经过几十年的发展,该技术已相当成熟。用荧光抗体示踪或检查相应抗原的方法称荧光抗体法;用已知的荧光抗原标记物示踪或检查相应抗体的方法称荧光抗原法。这两种方法总称免疫荧光技术。在实际工作中荧光抗原技术很少应用,所以人们习惯将荧光抗体技术称为免疫荧光技术免疫荧光技术具有高灵敏度和高特异性,可以检测非常低浓度的目标分子。PCNA免疫荧光
荧光抗体法和荧光抗原法都属于免疫荧光技术的范畴。X Hu Nuclei免疫检测
免疫荧光-实验步骤:细胞爬片免疫荧光:在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS浸洗3次,每次5min;(圆盖片:13mm24孔;18mm12孔;20mm6孔)用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻片3次,每次5min0.5%TritonX-100(PBS配制)室温通透20min(细胞膜上表达的抗原省略此步骤);PBS浸洗玻片3次,每次3min,吸水纸吸干PBS,在玻片上滴加3%的BSA(PBS配置),室温封闭30min5,吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻片滴加足够量用PBS稀释好的一抗并放入湿盒,4℃孵育过夜。加荧光二抗:PBS浸洗爬片3次,每次5min,吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,湿盒中室温孵育50min。X Hu Nuclei免疫检测