免疫荧光的原理和类型:免疫荧光利用荧光分子或荧光团在一定波长(分子的吸收光谱)下吸收光子的特性,经过短暂的间隔(发射光谱)后以较高的波长发射光子,并伴随能量损失。发射的荧光可通过显微镜观察到。荧光团可以通过可见光或紫外光激发。具有高光稳定性和荧光量子产率的荧光染料可在市场上购买,其激发较大值跨越从400到>700nm的波长范围。它们不会损伤活细胞,可安全用于生物制剂。在进行免疫荧光检测时,首先对细胞或组织进行固定和透化处理。进行免疫染色时,荧光团与目标抗原的抗体结合,然后使用成像显微镜观察荧光信号。根据使用的抗体和所需的信号扩增,免疫荧光可分为直接和间接两种类型。免疫荧光技术可以用于研究内脏移植和免疫抑制。JNK免疫荧光试验
荧光标记二抗的选择普遍;与使用荧光素结合一抗的检测相比,成本较低。间接免疫荧光的缺点:由于需要具有两种不同物种反应性的两种抗体,因此物种交叉反应性问题增加;与直接免疫荧光相比,时间更长(操作步骤更多)。间接免疫荧光的优点:通过增加能够与一抗结合的二抗数量进行信号放大;与直接免疫荧光相比,通过信号放大提高检测灵敏度;荧光标记二抗的选择普遍;与使用荧光素结合一抗的检测相比,成本较低。间接免疫荧光的缺点:由于需要具有两种不同物种反应性的两种抗体,因此物种交叉反应性问题增加;与直接免疫荧光相比,时间更长(操作步骤更多)。JNK免疫荧光试验免疫荧光技术可以用于研究病毒传播和免疫应答。
免疫荧光实验的注意事项:为了保证荧光染色的正确性,初次试验时需设置下述对照,以排除某些非特异性荧光染色的干扰。①标本自发荧光对照:标本加1-2滴0.01mol/L,pH7.4的PBS。②特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体。③阳性对照:已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光,阳性对照和待检标本呈强荧光,则为特异性阳性染色。一般标本在高压汞灯下照射超过3min,就有荧光减弱现象,经荧光染色的标本较好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。
荧光素标记抗体的方法:方法及步骤:①抗体的准备:取适量已知球蛋白浓度之溶液,置入三角烧瓶中,加入生理盐水及碳酸盐缓冲液,使然后蛋白浓度为20mg/ml,缓冲液容量为总量的1/10,混匀,将三角烧瓶置冰槽中,电磁搅拌(速度适当以不起泡沫为宜)5~10min。②荧光素的准备:根据欲标记的蛋白质总量,按每毫克蛋白加0.01mg荧光素,用分析天平准确称所取所需的异硫氰酸荧光素粉末。③结合(或称标记):边搅拌边将称取的荧光色素渐渐加入球蛋白溶液中,避免将荧光素粘于三角烧瓶壁或搅拌玻棒上(大约5~10min内加完),加毕后,继续搅拌12~18h。结合期间应保持蛋白溶液于4℃左右,故须及时添冰去水;亦可将结合装置安放在4℃冰箱或冰库中。免疫荧光技术可以用于研究细胞信号传导和信号通路。
免疫荧光固定(防止离体组织自溶抗原扩散),固定液包括:有机溶剂(甲醇、乙醇等);交联剂(4%PFA、10%中性福尔马林),固定液的选择取决于被研究抗原的性质及所用抗体的特性,不过,目前甲醛用的还是较多的,但针对磷酸化的抗体,不适合用甲醛,会导致磷酸蛋白从膜表面转移到胞浆中,故应选择冰冷的无水甲醇或无水乙醇,同时应注意甲醛会挥发,在4-8°C不宜储存太久。固定时间:取决于组合块的大小和类型,对于大多数组织,18-24h较为理想,细胞固定时间较短,一般2%的甲醛室温固定20min即可。以细胞样品为例:用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻片3次,每次3min。免疫荧光技术可以用于研究细胞内蛋白质的亚细胞定位。C-Caspas3免疫荧光分析
荧光抗原法是利用已知的荧光标记物来追踪或检查相应抗体的方法。JNK免疫荧光试验
细胞免疫荧光实验注意事项:根据所检测抗原所在位置来确认是否需要加入 Triton 进行通透。若所检测抗原表位位于膜蛋白的白外段,则不需要通透;一般 5% BSA 封闭即可达到效果;从加荧光二抗起,后面所有操作步骤尽量避光。缩短在荧光显微镜下的观察时间,1~2 h 为宜。染色后尽快荧光显微镜下观察,若不能可放入 4 ℃ 冰箱避光保存一周。无/弱染色:烤片温度过高,推荐 56~60 ℃ 1~2 h;一抗是否适用固定液和石蜡切片,使用浓度是否过低,孵育是否时间过短等。JNK免疫荧光试验
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