无血清细胞冻存液冻存细胞实验步骤:选择冻存处于对数生长期的细胞有助于提高复苏细胞存活率。1.按照常用方法收集悬浮细胞或贴壁细胞于试管中。2.按照培养细胞密度和所用细胞冻存管的尺寸计算所需冻存细胞数。(参考:5×105至5×106cells/ml)。3.取相当于所需细胞数的细胞悬浮液量,置于离心管中,离心收集培养细胞(参考离心条件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去离心管中的上清液。4.加入适量的无血清型细胞冻存液于离心管中,使细胞浓度为5×105至5×106cells/ml。缓慢地混合均匀,制成细胞混合液。5.将离心管中的细胞混合液分装于已标示完全的冷冻保存管中。6.直接将含细胞混合液的冻存管放入-80℃冰箱,长期冷冻保存。7.若研究者需要液氮保存时,可将完全冻结的冻存管(放入-80℃冰箱后至少一昼夜)移至-196℃液氮罐。细胞存储中对细胞冻存更有特殊要求。广州无血清细胞冻存液单价
复苏方:法1)从冰箱里取出细胞冷冻保存管,立即放入37℃振动水浴槽中快速解冻。2)待冻存管中细胞混合液完全融化后,立即加入1ml细胞培养基于该冷冻管中与细胞混合,再将细胞混合液从冻存管中移入含有9ml该细胞培养基的试管中,混合均匀。3)离心收集培养细胞(参考离心条件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4)清洗细胞,充分洗净残留冻存液。5)加入适量的新鲜细胞培养基,使用移液管缓缓地均匀细胞混合液。适量地稀释后,将细胞混合液移至事先准备好的培养瓶中。6)镜检后,研究者可根据各自方法和需要来进行细胞培养。无锡济南无血清细胞冻存液无血清冻存液使用方法:收集悬浮细胞或贴壁细胞,离心去除上清培养液。
无血清细胞冻存液与含血清细胞冻存液对比:传统的细胞冻存液是使用培养基、血清和DMSO按照一定的比例混合,其中DMSO的含量是10%,血清的含量是10%,统称为含血清细胞冻存液。含血清细胞冻存液的一般的冻存方法是梯度降温冻存法,如先将冷冻管置于4℃冰箱10分钟,然后移至-20℃冰箱30分钟,再移至-80℃冰箱保存16-18个小时(或隔夜),较后才移至液氮罐中进行长期的储存。可见,含血清细胞冻存液冻存细胞时遇到的问题:1.冻存细胞时需现配冻存液(如购买市面上通用的含血清细胞冻存液,此步可省略)。2.需要程序降温(4℃→-20℃→-80℃→液氮),步骤繁琐,耗时耗力。3.含血清,细胞污染(病毒、霉菌和支原体等)的风险更高。4.血清批次、品质间差异导致冻存液的批次间差异。5.需液氮冻存,且不能原位(如孔板)冻存。
细胞冻存注意事项:1.取细胞的过程中注意带好防冻手套,护目镜。此项尤为重要,细胞冻存管可能漏入液氮,解冻时冻存管中的气温急剧上升,可导致炸列。2.冻存液的问题:冻存液的配置已是常识,在这里不作详述,但二甲基亚砜(DMSO)对细胞不是完全无毒副作用,在常温下,二甲基亚砜对细胞的毒副作较大,因此,必须在1-2min内使冻存液完全融化。如果复苏温度太慢,会造成细胞的损伤,二甲基亚砜(DMSO)选择进口产品。3.离心前须加入少量培养液。细胞解冻后二甲基亚砜浓度较高,注意加入少量培养液可稀释其浓度,以减少对细胞的损伤。根据密度调整细胞冻存 液用量。
细胞冻存和复苏操作步骤:细胞冻存和复苏采取“慢冻快融”的原则,慢速冷冻可使细胞内的水份渗出细胞外,减少细胞内形成冰晶的机会,快融以保证细胞外结晶快速融化,避免慢速融化水份渗入细胞内,再次形成胞内冰晶造成对细胞的损伤。细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融,实验证明这样可以比较大限度的保存细胞活力。目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂,这两种物质能提高细胞膜对水的通透性,加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外,减少细胞内冰晶的形成,从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。复苏细胞应采用快速融化的方法,这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化,避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。无血清冻存液特性:不含动物成分。上海无血清细胞冻存液直销价
无血清细胞冻存液,通用于人和各种动物细胞株。广州无血清细胞冻存液单价
无血清细胞冻存液,含多种保护剂成分。一些保护剂,易于穿透细胞,避免细胞内部水分子形成冰晶损伤细胞,同时另一些保护剂不能穿透细胞,但可以在冰晶形成之前,优先结合细胞外的水分子,降低细胞外溶液的电解质浓度,减少阳离子进入细胞的数量,为多种保护剂组合,在细胞内外进行双重保护,较大提高了细胞复苏存活率。无血清细胞冻存液不含牛血清,无动物源组份。2-8℃即可稳定保存,无需冷冻,即取即用。冻存细胞,无需程序降温。冻存细胞复苏率在90%以上。广州无血清细胞冻存液单价