上海无血清细胞冻存液产品介绍

细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融，实验证明这样可以较大限度的保存细胞活力。目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质能提高细胞膜对水的通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。复苏细胞应采用快速融化的方法，这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化，避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。细胞冻存是细胞培养、引种、保种和保证实验顺利进行的重要技术手段。在细胞建株和建系中，及时冻存原始细胞是十分重要的。在杂交瘤单克隆抗体的制备过程中，杂交瘤细胞、每次克隆化得到的亚克隆细胞的冻存保种常常是必不可少的实验操作。因为在没有建立一个稳定的细胞系或稳定分泌抗体的细胞系的时候，细胞的培养过程中随时可能因细胞的污染、分泌抗体能力的丧失或遗传变异等等导致实验失败，如果没有原始细胞的冻存，则因为上述的意外而前功尽弃。无血清细胞冻存液不含牛血清，无动物源组份。上海无血清细胞冻存液产品介绍

干细胞无血清冻存液操作事项：使用说明：1.细胞消化和计数，用胰酶对待冻存的细胞进行消化，并对细胞进行计数。2.1000转/min离心5分钟（4℃），去掉上清。3.根据细胞计数的情况，加入适量的干细胞无血清冻存液，使细胞密度在1×106左右（或根据自己希望达到的细胞密度）。4.轻轻地重悬细胞（务必重悬均匀）。5.将重悬的细胞按等份加入到灭菌的冻存管（需提前做好标记或者贴上标签）中，旋紧冻存管盖。6.将冻存管放入冻存盒中，然后将冻存盒直接放入-80℃。7.第二天将细胞从-80℃转移到液氮中。注意事项：1.用处于对数生长期的细胞进行冻存。2.控制好胰酶的消化时间，切记消化过度，会影响复苏效果。3.重悬细胞的过程中，请务必要轻柔，以免损伤细胞，但同时也一定要充分重悬，这样细胞在复苏时才不会成团。4.细胞操作请注意无菌。合肥正规无血清细胞冻存液厂家供应无血清细胞冻存液的优势：含DMSO、糖类、氨基酸等成分的一款通用型细胞冻存液。

细胞冻存是细胞保存的主要方法之一。利用冻存技术将细胞置于-196℃液氮中低温保存，可以使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来，这样在需要的时候再复苏细胞用于实验。而且适度地保存一定量的细胞，可以防止因正在培养的细胞被污染或其他意外事件而使细胞丢种，起到了细胞保种的作用。除此之外，还可以利用细胞冻存的形式来购买、寄赠、交换和运送某些细胞。细胞冻存时向培养基中加入保护剂--终浓度5%．15%的甘油或二甲基亚砜(DMSO)，可使溶液冰点降低，加之在缓慢冻结条件下，细胞内水分透出，减少了冰晶形成，从而避免细胞损伤。采用"慢冻快融"的方法能较好地保证细胞存活。标准冷冻速度开始为-1到-2℃/min，当温度低于-25℃时可加速，到-80℃之后可直接投入液氮内(-196℃)。

无血清细胞冻存液：解冻解冻后，应该立即铺板在预先包被好的培养皿中。上述冻存的一管细胞可以成功的铺板到6孔板的1-2孔。1.开始之前，提前准备好以下材料：试管，恢复至室温的培养基，预先包被的培养板，确保整个解冻复苏程序可以在较短的时间内完成。注意：不要在37°C水浴中加热培养基。2.在37°C水浴中快速解冻，持续温和的在水中晃动冻存管，直到剩余少量细胞还处于冻存状态。3.水浴中取出冻存管，用70%的酒精或异丙醇擦拭除菌。4.用2mL的血清移液管把细胞悬液转移到一个15mL的锥形试管。注意：用2mL的血清移液管代替1mL的头可以减少细胞聚集体的分解。在冻存细胞时将细胞悬浮于冻存液中，可使冰点降低，提高细胞膜对水的通透性。

无血清快速细胞冻存液细胞冷冻保存方法：选择冻存处于对数生长期的细胞有助于提高复苏细胞存活率。1.按照常用方法收集悬浮细胞或贴壁细胞于试管中。2.按照培养细胞密度和所用细胞冻存管的尺寸计算所需冻存细胞数。（参考：5×105至5×106cells/ml）。3.取相当于所需细胞数的细胞悬浮液量，置于离心管中，离心收集培养细胞（参考离心条件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去离心管中的上清液。4.加入适量的无血清型细胞冻存液于离心管中，使细胞浓度为5×105至5×106cells/ml。缓慢地混合均匀，制成细胞混合液。5.将离心管中的细胞混合液分装于已标示完全的冷冻保存管中。6.直接将含细胞混合液的冻存管放入-80℃冰箱，长期冷冻保存。7.若研究者需要液氮保存时，可将完全冻结的冻存管（放入-80℃冰箱后至少一昼夜）移至-196℃液氮罐。无血清细胞冻存液使用方法：加入适量的无血清型细胞冻存液于离心管中。上海无血清细胞冻存液产品介绍

无血清细胞冻存液，2-8℃保存即可，无需再进行分装。上海无血清细胞冻存液产品介绍

细胞冻存注意事项：离心问题：目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养，第二天换液。因为离心的目的是两个，去除DMSO，去除死细胞，这个是标准流程，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间，转的不够活细胞沉底的少，细胞就全被扔掉了，转过了活细胞会受压过大，死亡。此外在操作过程中容易污染，所以不推荐。另一种说法为细胞悬液中含有二甲基亚砜（DMSO），DMSO对细胞有一定的毒副作用，所以须将离心后的液体前倒净，且一定倒干净。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏，结果无有异常。上海无血清细胞冻存液产品介绍