一、实验准备
仪器设备:将 HoloMonitor® M4 放置在培养箱内,并确保仪器稳定,连接好相关电源及数据线;准备配套的计算机,配置需满足系统要求,安装好 HoloMonitor® M4 App Suite 软件 。
实验材料:选择合适的细胞培养容器,如 6 孔板、24 孔板、96 孔板或培养皿等(参考推荐容器列表选择),准备对应容器的 HoloLid™和容器支架;获取用于实验的*细胞系,如乳腺*细胞系 JIMT-1、三阴性乳腺*细胞 MDA-MB-231 等,并准备相应的细胞培养基、血清、***等细胞培养试剂。
耗材准备:根据实验需求准备移液枪、移液器吸头、无菌离心管等耗材,所有耗材需经过无菌处理。
二、细胞接种与培养
细胞复苏:从液氮罐中取出冻存的*细胞,迅速放入 37℃水浴锅中解冻,解冻后将细胞转移至离心管,加入适量培养基,1000 - 1500rpm 离心 5 分钟,弃上清,加入新鲜培养基重悬细胞。
细胞计数:使用细胞计数仪或血球计数板对重悬后的细胞进行计数,确定细胞浓度。
细胞接种:根据实验设计,将*细胞以合适的密度接种到培养容器中。如进行细胞增殖实验,可接种约 5% 汇合度(约 6000 - 11000 个细胞 /cm² )的细胞 ;接种后轻轻晃动培养容器,使细胞均匀分布。
细胞培养:将接种好细胞的培养容器放入培养箱,在适宜的温度(通常为 37℃)、湿度及气体环境(5% CO₂ )下培养,让细胞贴壁生长 2 - 24 小时 。
三、HoloMonitor® M4 系统设置与校准
启动软件:打开计算机,启动 HoloMonitor® M4 App Suite 软件,等待软件完成初始化,软件界面加载完成后,确保仪器各组件连接正常。
自动校准:在软件中选择自动校准功能,按照软件提示进行操作,完成校准后,检查校准结果是否符合要求(如光路校准、焦距校准等,校准成功会有相应提示),确保仪器处于比较好工作状态。
四、实验样本准备与上机
样本处理:若实验涉及药物处理*细胞,在细胞贴壁后,根据实验设计配置不同浓度的药物溶液,小心加入到培养容器中,注意药物的**终工作体积需符合 HoloLid™使用要求(参考不同容器对应的工作体积数据) 。
安装 HoloLid™与放置样本:将无菌的 HoloLid™替换培养容器的标准盖子;把装有细胞样本的培养容器放置在对应的容器支架上,确保容器平行放置且固定良好(使用多孔板时,将有缺口的一角朝左放置 );将容器支架连同样本小心放置在 HoloMonitor® M4 的载物台上 。
五、实验参数设置与运行
选择实验类型:在 HoloMonitor® M4 App Suite 软件中,根据研究目的选择相应的实验模块,如细胞增殖实验选择 “Kinetic Proliferation Assay”,细胞迁移实验选择 “Single Cell Tracking” 或 “Wound Healing Assay” 等 。
参数设置:设置成像时间间隔、成像时长等参数。例如,进行细胞增殖实验,可设置每隔 1 - 2 小时采集一次图像,成像时长根据细胞增殖速度确定,一般为 24 - 96 小时;若进行细胞迁移实验,对于迁移速度较快的*细胞,可缩短成像时间间隔至 15 - 30 分钟 。
开始实验:确认参数设置无误后,点击 “Start” 按钮开始实验,HoloMonitor® M4 开始自动采集细胞图像,在实验过程中,可通过软件界面实时查看细胞状态和成像进度 。
六、数据采集与分析
数据采集:实验过程中,HoloMonitor® M4 持续采集细胞的全息图像,软件自动记录相关数据,如细胞计数、细胞汇合度、细胞形态参数(面积、体积、厚度等)、细胞运动参数(迁移距离、速度等) 。
数据分析:实验结束后,使用 HoloMonitor® M4 App Suite 软件的分析功能对数据进行处理。如在细胞增殖实验中,软件自动生成细胞数量随时间变化的曲线、细胞汇合度变化曲线;在细胞迁移实验中,分析细胞的迁移轨迹、计算迁移速度和迁移方向等;还可利用软件的导出功能,将数据导出至 Excel 等软件进行进一步的统计学分析,如计算平均值、标准差,进行***性差异检验等 。

数据可视化:利用***彩***和图像,直观展示*细胞在不同时间点的形态变化、运动轨迹等;也可将处理后的数据制作成图表(如折线图、柱状图),清晰呈现实验结果,用于撰写研究报告或论文发表 。
七、使用优势
节省资源成本:无需昂贵消耗品与标记试剂,减少动手时间与细胞浪费,单次实验数据可重复用于多维度分析。
结果精细可靠:实时连续成像(图像捕获率 1image/s),避免手动取样误差,自动分析减少用户偏见,直接获取定量测量结果。
细胞友好性高:无标记、无光毒性,成像后细胞可继续用于后续研究,尤其适配诱导多能干细胞(iPS)、原代细胞等脆弱细胞类型。
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