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细胞冻存和复苏的原则是：慢冻速融，这样更加有利于保持细胞的活力。冻存细胞不加任何保护剂，会导致细胞内冰晶的产生，从而使细胞产生内源性的机械损伤，引起细胞内环境渗透压，PH，电解质等的改变，进而促使细胞死亡。在过去的几十年中，科研工作者将培养基、血清和DMSO按照一定的比例配制成冻存液，并配合手工使细胞从4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步转移使其达到“慢冻”的效果。但这种自制的冻存液储存时间一般比较短，不能满足时间跨度大的实验项目的需求。且这样人力和时间成本大，人手操作的误差和血清制品的批间差也给实验结果带来了不稳定性。随着细胞治好以及细胞储存产业发展，细胞冻存也面临从科研应用走向产业转化。厦门无血清细胞冻存液服务电话

细胞冻存中的注意事项：细胞冻存开始时，要温好相应的培养基和相应的试剂，以及计数耗材，避免操作过程中手忙脚乱。用移液管吹打相应的胞液时，要保证移液管在液面以下吹打，管内要有液体，防止产生相应的气泡，气泡的张力会影响细胞的活率和生存状态。计数细胞时要保证取胞液时也要混匀，这个过程比较重要，细胞不混匀，计数不准，此外吹打应该轻柔，避免细胞在吹打的过程中出现了相应的死亡。冻存离心用50ml离心管比较好，加冻存液吹打混匀比较方便，离心后不能过多地晃动离心管。当离心管液体较多的时候，可以直接倾倒，不要磕，多余的液体较好用泵吸出比较好。冻存支数少的情况，用泵头轻柔吹打，避免出现气泡，冻存支数多用移液管吹打。开封正规无血清细胞冻存液厂家供应无血清细胞冻存液，2-8℃保存即可，无需再进行分装。

细胞冻存注意事项：离心问题：目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养，第二天换液。因为离心的目的是两个，去除DMSO，去除死细胞，这个是标准流程，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间，转的不够活细胞沉底的少，细胞就全被扔掉了，转过了活细胞会受压过大，死亡。此外在操作过程中容易污染，所以不推荐。另一种说法为细胞悬液中含有二甲基亚砜（DMSO），DMSO对细胞有一定的毒副作用，所以须将离心后的液体前倒净，且一定倒干净。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏，结果无有异常。

无血清快速细胞冻存液冻存细胞复苏方法：1、从冰箱里取出细胞冷冻保存管，立即放入37℃振动水浴槽中快速解冻。2、待冻存管中细胞混合液完全融化后，立即加入1ml细胞培养基于该冷冻管中与细胞混合，再将细胞混合液从冻存管中移入含有9ml该细胞培养基的试管中，混合均匀。3、离心收集培养细胞（参考离心条件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4、清洗细胞，充分洗净残留冻存液。5、加入适量的新鲜细胞培养基，使用移液管缓缓地均匀细胞混合液。适量地稀释后，将细胞混合液移至事先准备好的培养瓶中。6、镜检后，研究者可根据各自方法和需要来进行细胞培养。无血清细胞冻存液：2-8℃即可稳定保存，无需冷冻，即取即用。

细胞冻存液的原理及配制方法：细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融，实验证明这样可以较大限度的保存细胞活力。目前细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质能提高细胞膜对水的通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。复苏细胞应采用快速融化的方法，这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化，避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。无血清冻存液用途：为确保产品质量，请避免反复冻融相关产品。无锡正规无血清细胞冻存液进货价

清洗细胞，充分洗净残留冻存液。厦门无血清细胞冻存液服务电话

冻存温度：冻存温度是指能长期保存细胞的较低温度，在此温度下，细胞生化反应极其缓慢甚至停止，但经过长期保存，在复苏后仍能保持正常的结构和功能。 不同的细胞和生物体以及使用不同的冷冻保存方法要取得同样的冷冻保存效果，冷冻保存温度可以不同。但从实际和效益的观点出发，液氮温度-196℃是 目前较佳的冷冻保存温度。在-196℃时，细胞的生命活动几乎完全停止，但复苏后细胞的结构和功能完好。如果冷冻过程得当，一般生物样品在-196℃下均可保存十年以上。应用-70℃～-80℃保存细胞，短期内对细胞的活性无明显影响，但随着冻存时间延长，细胞存活率明显降低。在冰点到-40℃范围内保存细胞的效果不佳。厦门无血清细胞冻存液服务电话

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